药用植物掌叶半夏快繁研究
参见附件。
【摘要】掌叶半夏块茎含有B-谷甾醇-D-葡萄糖甙、3，4-二羟基乙酸及葡萄糖甙，还含有多种氨基酸及生物碱等。味辛，性温，有毒。归脾、胃、肺经。具有祛湿化痰，降逆止吐，消痞散结作用。主治咳嗽痰多，胸闷胀满，晕眩痞闷，恶心呕吐。生用外治痈肿等症。
【关键词】掌叶半夏植物组织培养无菌操作技术生长调节剂出苗率
一、掌叶半夏简介。掌叶半夏为多年生草本植物。块茎球形或扁球形，径约4cm。叶柄纤细柔弱，淡绿色，长45～65cm；叶片掌状分裂，小叶9～11片。肉穗花序顶生，花序柄与叶柄等长或稍长；佛焰苞淡绿色，披针形，下部筒状，长圆形，先端锐尖，长8～14cm；花单性，无花被，雌雄同株。浆果卵圆形，绿色，长4～5mm，径2～3mm，内含种子1粒。幼苗常为单叶，卵状心形；老株叶为3片小叶复叶。浆果成熟时为红色。花期为5月～7月，果期为6月～9月。
二、植物组织培养的研究意义。1.用于器官分化、形态建成、物
质代谢以及细胞遗传、病毒学等方面的研究。2.用于快速繁殖无性系，即从一个器官、组织或细胞经过多代培养而得到的后代。3.用于培养无病毒植株。植物的幼嫩部分一般尚未感染病毒。4.用于改良植物品种。5.用于植物性药物生产。
三、实验方法
1.实验材料。掌叶半夏块茎
2.研究方案。(1)比较不同激素及激素配比对愈伤组织诱导及植株再生的影响。(2)比较不同生长条件对愈伤组织诱导及植株再生的影响，选择适宜的生长发育条件。(3)建立掌叶半夏组织培养的再生系统，为工厂化生产提供技术体系。
3.药品器皿及仪器设备。试剂和药品: MS培养基，2,4-D，KT，琼脂，酒精，蒸馏水等。器皿:三角瓶，烧杯，容量瓶，量筒，移液器，滴管，试管，培养皿等。仪器设备：超净工作台，高压灭菌锅，烘箱，TD-调温万用炉，酒精灯等。其他用品：塑料筐，脱脂棉，移液枪，纱布，火柴，棉绳，牛皮纸，记号笔，标签纸，镊子等。
4.实验步骤。步骤一：培养基的配置。母液为MS培养基，蔗糖3%,琼脂1.5%,pH 5.8。分别加入：(1)：KT 1.0 mg/L + 2,4-D(0.1，0.2,0.5，1.0，2.0)mg/L；(2)：2,4-D0.2mg/L+KT(0.1，0.2, 0.5，1.0，2.0) mg/L。步骤二：实验材料的消毒灭菌。先将掌叶半夏块茎用流水冲洗干净，再用75%酒精漂洗15s，无菌水冲洗2～3次，最后用0.1%升汞消毒10～12min，无菌水冲洗4次。将实验器皿及相关用品用牛皮纸或报纸包好，灭菌。培养基用灭菌锅在0.1kPa的压力下维持121℃湿热灭菌25～30min。步骤三：接种培养。将块茎切成0.3×0.3×0.3cm3的小块,接种在固体培养基上,培养温度25±2℃,光强1500lx,每天光照12h。步骤四：炼苗与移栽。当试管苗高4～6cm时，便可在室内打开瓶口炼苗2～3天，然后取出，洗净根系上的培养基，转移到装有土和沙子(1∶1)的塑料网筛，再放置于温室中，温室湿度80%以上，温度15～20℃，经过10天左右在转移到大田栽培[3]。观察幼苗的生长情况，记录各种激素处理下的苗数。
四、实验结果与分析
1.愈伤组织的诱导与培养。任何植物细胞或组织培养体系的建立，都必须选择适宜的外植体。经研究，掌叶半夏即可用其块茎，也可采用其叶片、叶柄、珠芽、种子等作为外植体 ......
【摘要】掌叶半夏块茎含有B-谷甾醇-D-葡萄糖甙、3，4-二羟基乙酸及葡萄糖甙，还含有多种氨基酸及生物碱等。味辛，性温，有毒。归脾、胃、肺经。具有祛湿化痰，降逆止吐，消痞散结作用。主治咳嗽痰多，胸闷胀满，晕眩痞闷，恶心呕吐。生用外治痈肿等症。
【关键词】掌叶半夏植物组织培养无菌操作技术生长调节剂出苗率
一、掌叶半夏简介。掌叶半夏为多年生草本植物。块茎球形或扁球形，径约4cm。叶柄纤细柔弱，淡绿色，长45～65cm；叶片掌状分裂，小叶9～11片。肉穗花序顶生，花序柄与叶柄等长或稍长；佛焰苞淡绿色，披针形，下部筒状，长圆形，先端锐尖，长8～14cm；花单性，无花被，雌雄同株。浆果卵圆形，绿色，长4～5mm，径2～3mm，内含种子1粒。幼苗常为单叶，卵状心形；老株叶为3片小叶复叶。浆果成熟时为红色。花期为5月～7月，果期为6月～9月。
二、植物组织培养的研究意义。1.用于器官分化、形态建成、物
质代谢以及细胞遗传、病毒学等方面的研究。2.用于快速繁殖无性系，即从一个器官、组织或细胞经过多代培养而得到的后代。3.用于培养无病毒植株。植物的幼嫩部分一般尚未感染病毒。4.用于改良植物品种。5.用于植物性药物生产。
三、实验方法
1.实验材料。掌叶半夏块茎
2.研究方案。(1)比较不同激素及激素配比对愈伤组织诱导及植株再生的影响。(2)比较不同生长条件对愈伤组织诱导及植株再生的影响，选择适宜的生长发育条件。(3)建立掌叶半夏组织培养的再生系统，为工厂化生产提供技术体系。
3.药品器皿及仪器设备。试剂和药品: MS培养基，2,4-D，KT，琼脂，酒精，蒸馏水等。器皿:三角瓶，烧杯，容量瓶，量筒，移液器，滴管，试管，培养皿等。仪器设备：超净工作台，高压灭菌锅，烘箱，TD-调温万用炉，酒精灯等。其他用品：塑料筐，脱脂棉，移液枪，纱布，火柴，棉绳，牛皮纸，记号笔，标签纸，镊子等。
4.实验步骤。步骤一：培养基的配置。母液为MS培养基，蔗糖3%,琼脂1.5%,pH 5.8。分别加入：(1)：KT 1.0 mg/L + 2,4-D(0.1，0.2,0.5，1.0，2.0)mg/L；(2)：2,4-D0.2mg/L+KT(0.1，0.2, 0.5，1.0，2.0) mg/L。步骤二：实验材料的消毒灭菌。先将掌叶半夏块茎用流水冲洗干净，再用75%酒精漂洗15s，无菌水冲洗2～3次，最后用0.1%升汞消毒10～12min，无菌水冲洗4次。将实验器皿及相关用品用牛皮纸或报纸包好，灭菌。培养基用灭菌锅在0.1kPa的压力下维持121℃湿热灭菌25～30min。步骤三：接种培养。将块茎切成0.3×0.3×0.3cm3的小块,接种在固体培养基上,培养温度25±2℃,光强1500lx,每天光照12h。步骤四：炼苗与移栽。当试管苗高4～6cm时，便可在室内打开瓶口炼苗2～3天，然后取出，洗净根系上的培养基，转移到装有土和沙子(1∶1)的塑料网筛，再放置于温室中，温室湿度80%以上，温度15～20℃，经过10天左右在转移到大田栽培[3]。观察幼苗的生长情况，记录各种激素处理下的苗数。
四、实验结果与分析
1.愈伤组织的诱导与培养。任何植物细胞或组织培养体系的建立，都必须选择适宜的外植体。经研究，掌叶半夏即可用其块茎，也可采用其叶片、叶柄、珠芽、种子等作为外植体 ......
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