AC及AC(Ag)对细菌的吸附及灭菌功能的对比研究
万怡灶 王玉林 董向红 周福刚 成国祥 温廷益 韩森
测定了活性碳(AC)及载银活性碳(AC(Ag))的比表面积和孔径分布曲线，对比研究了AC及AC(Ag))对大肠杆菌的吸附能力和灭菌性能。结果表明，载银后，虽然AC(Ag)的比表面积下降，但由于银的存在，使其吸附的大肠杆菌数量高于AC，而吸附速率低于AC。灭菌试验表明，AC对大肠杆菌没有杀灭能力，而AC(Ag)对大肠杆菌有较好的灭菌功能。
关键词：活性碳；银；大肠杆菌；灭菌性能；吸附
0 引 言
活性碳(以下简作-AC)比表面积大，吸附性能好，与活性碳纤维相比，其制造工艺比较成熟，价格便宜，因而仍是最广泛使用的工业吸附剂[1]。它可用于废水处理和净化饮用水，作分子筛，制作航天飞机的空气过滤器，用于贵重金属回收等[1～3]。此外，由于AC具有非活性碳相似的结构与性能，也具备一般碳材料的生物相容性和生物化学相容性等[4]，因而也广泛应用于医学领域，如血液过滤等。无论是用于净化水还是用于生物医学工程领域，AC与细菌的生物相容性始终是一个非常重要的参数。在生物医学工程方面，细菌在植入材料上的粘附是导致植入材料伴生感染的主要原因之一[5]，如AC能将粘附其上的细菌杀灭，则可避免此种感染的发生。
, 百拇医药
已有研究表明[6，7]，当活性碳纤维应用于净化饮用水时，被吸附的细菌可在其表面生长、繁殖，造成对饮用水的二次污染，为克服这一弊端，采用了含银的活性碳纤维或表面载银的活性纤维[8]。但对AC与细菌作用机制的研究却不多。由于活性碳纤维与AC的性能有着较大的差别，因此，细菌能否在AC上粘附、生长或繁殖也值得研究。
本文以AC及载银活性碳(以下记为-AC(Ag))为研究对象，选择大肠杆菌为代表，并采用“halo”试验法[9]，即抑菌环法对比研究二者对大肠杆菌的作用。由于细菌吸附是细菌与材料作用的第一步[10]，本文首先对二种材料的细菌吸附行为进行了研究。
1 实验材料与方法
1.1 实验材料
本实验所用的AC由山西新华化工厂提供，AC(Ag)由浸渍法获得。
, 百拇医药
1.2 菌种及其培养
1.2.1 菌种
大肠杆菌JM109(Escherichia coli JM109)。
1.2.2 培养基
固体培养基(LB培养基)，其组成为(g/L)：蛋白胨10；酵母提取物5；氯化钠10；琼脂粉2。液体培养基的组成为(g/L)：蛋白胨10；酵母粉5；氯化钠10；pH7.4。
1.2.3 培养条件
在950mL去离子水中加入蛋白胨、酵母提取物、氯化钠，摇动容器直至溶质完全溶解，用5mol/L NaOH(约0.2mL)调pH值至7.0，加入去离子水至总体积为1L，加入2g琼脂粉，高压下蒸气灭菌20min，将已灭菌的琼脂培养基冷却到45℃铺平板，然后接种大肠杆菌于固体培养基中。将试样依次放入接种过大肠杆菌的固体培养基表面。放入恒温箱中，恒温(37℃)培养24h。
, 百拇医药
1.2.4 大肠杆菌菌液的制备
将接种过大肠杆菌的液体培养基锥形瓶固定在恒温(37℃)摇床上振荡培养24h，经分离提纯后制成大肠杆菌悬浊液。再用缓冲液(18.2g/L NaCl; 3.1g/L Na2HPO4*12H2O;0.2g/L NaH2PO4*2H2O;pH7.4)配制成1010cfu/ml的细菌溶液。
1.3 性能测试与表征
1.3.1 比表面积与孔径分布的测定
比表面积采用ASAP-2400自动物理吸附仪测定。试样在1.33Pa真空条件下于300℃脱气4h，以高纯N2为载气和吸附质，用BET和Langmuir法计算并经计算机处理得到最终结果。
, 百拇医药
1.3.2 细菌吸附试验
将相同体积的不同样品放入缓冲液中浸泡，而后依次放入小烧杯中，将细菌悬浊液摇匀，用消毒过的滴管依次滴注于各试样上，每个烧杯内滴20mL，并使各烧杯中的菌液混匀。每隔1h各取出一块试样，先在20%戊二醛液中浸泡片刻，然后分别在30%、50%和100%的丙酮溶液中脱水。表面喷金处理后，用X-650扫描电镜观察细菌的分布并计算单位面积(mm2)吸附的细菌数量，每个试样随机取6个视场计算细菌数量。
1.3.3 灭菌性能
灭菌试验采用“halo”试验法。当试样具有灭菌功能时，将在其周围形成透明环，即抑菌环[10]。样品的灭菌性能由抑菌环的宽度评价[11]。用普通摄相机拍摄抑菌环照片，然后采用JC-2型晶粒度测量仪(×50)测出抑菌环的宽度。为保证数据的准确性，每隔60°在不同的方向对每个抑菌环各测量6次，每种试样各取3～5个样品进行“halo”试验，抑菌环宽度为各样品抑菌环宽度的平均值。
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2 结果分析
2.1 细菌的分布特征
细菌在AC及AC(Ag)表面的分布形态如图1所示。可见，大肠杆菌在AC表面的分布较均匀；而在AC(Ag)表面，大肠杆菌仅分布于银颗粒之间，未见有细菌分布于银颗粒表面，表现为非均匀分布的特征。
图1 大肠杆菌在(a)AC (b)AC(Ag)表面的分布形态
2.2 AC及AC(Ag)的孔结构特征
比表面积的测定结果显示，AC的比表面积为970m2/g，而载银后比表面积下降了39%,为588m2/g。图2是AC及AC(Ag)的孔径分布曲线。可见，AC具有二个极大孔分布，一个位于2.1nm，另一个位于13nm左右；而载银后，AC(Ag)仍具有二个极大孔分布，一个位于1.8nm，另一个峰也位于13nm附近，但不明显。与AC相比，其极值下降了46%。这表明，AC载银后，孔径为13nm左右的孔大部分为银颗粒所堵塞。
, 百拇医药
2.3 AC与AC(Ag)对大肠杆菌的吸附动力学
AC及AC(Ag)细菌吸附实验的结果示于图3。可见，AC及AC(Ag)对细菌的吸附作用差别不大，但吸附速率有所不同。AC的吸附速率显著高于AC(Ag)，AC在吸附1h后，其大肠杆菌吸附量就达到平衡吸附量的80%以上，2h后就达到吸附平衡状态；而AC(Ag)1h后的吸附量为40%左右，2h后还不到70%，3h后才开始趋向平衡。此外，二者的平衡吸附量也存在区别，AC的平衡吸附量约为4.5×105cfu/mm2,而AC(Ag)的平衡吸附量为5.3×105cfu/mm2。
图2 AC及AC(Ag)的孔径分布曲线
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图3 细菌吸附数量与吸附时间的关系曲线
2.4 灭菌性能
灭菌试验的结果示于图4。其中图4(b)为AC(Ag)试样的抑菌环照片，图中明显可见试样周围的抑菌环，其平均宽度为1.36mm,其余为细菌正常生长的部分，表明AC(Ag)具有较强的灭菌功能。而AC试样的周围未见有抑菌环(如图4(a)所示)，AC周围的细菌可正常生长。
图4 AC(a)及AC(Ag)(b)的抑菌环照片
3 讨论
固体材料对细菌的吸附与材料的亲水性/疏水性、表面电荷、表面化学成分和表面形态有关[12]。而作为吸附材料，影响最显著的因素是比表面积。AC与AC(Ag)相比，其亲水性、表面成分(不包括Ag)和表面形态相差不大，而且，载银过程也不改变原始AC的结构参数。但AC表面载银后，其比表面积大幅度下降，从孔径分布结果看，载银后，孔径为13nm的孔多数被银颗粒所堵塞，而正是这种尺寸的孔最适于吸附微生物[13],这似乎意味着，AC所吸附的大肠杆菌数量应多于AC(Ag)(这种吸附可称之为物理吸附，其吸附的细菌数量随比表面积的增大而增加)。实测的结果并非如此，AC(Ag)的平衡吸附量反而高于AC。这是由于AC(Ag)表面带正电，而大肠杆菌带负电[5]，因此，除了物理吸附外，AC(Ag)还存在对大肠杆菌的化学吸附，这样就使其吸附的大肠杆菌数量增加，并超过AC所吸附的细菌数量。此外，二者在吸附动力学上的差别，说明化学吸附比物理吸附需要更长的时间才能达到平衡。
, 百拇医药
灭菌实验结果表明，未载银的AC对大肠杆菌没有杀灭能力，只有当其表面载银以后才具备灭菌功能。银的灭菌性能与它对细胞表面或DNA分子的作用有关，银离子会与细胞膜和细胞壁结合，从而减少或终止DNA、RNA和蛋白质的合成；银离子也可以取代DNA分子中的氢键而导致DNA分子中双螺旋结构的畸变，最终使细菌不能存活[11]。
虽然AC也对大肠杆菌有吸附作用，能将大肠杆菌吸附于表面，但因其良好的生物相容性，被吸附在表面的细菌仍然可以正常生长，而不会遭受破坏。由此可知，AC(Ag)的灭菌能力来源于银，确切地说来源于银所释放的银离子，这一点已为许多实验所证实[11，14]。可以认为，AC(Ag)的灭菌机制体现在两个方面。首先，AC(Ag)对细菌有吸附作用(包括物理吸附和化学吸附)，使得大肠杆菌与银直接接触而被杀灭；其次，由于AC(Ag)表面的银释放银离子，而银离子具有很强的渗透能力[15]，因而可向周围扩散，使得与银离子接触的细菌死亡。对AC(Ag)来说，吸附数量的增加将有助于提高其灭菌功能，而AC(Ag)的吸附能力与银含量和原始比表面积等因素有关。因此AC(Ag)最终的灭菌功能也与银含量及AC的原始表面积有关。
, 百拇医药
4 结论
(1)AC载银后，其比表面积显著下降，孔径分布发生变化，多数最适于吸附细菌的孔(孔径为13nm左右)被银颗粒所填塞，使AC(Ag)的物理吸附作用下降。
(2)AC及AC(Ag)均对大肠杆菌有较强的吸附能力，AC对大肠杆菌的吸附为物理吸附，其吸附速率较快；AC(Ag)对大肠杆菌既有物理吸附又有化学吸附，使其平衡吸附量高于AC。
(3)AC对大肠杆菌没有杀灭能力，AC(Ag)对大肠杆菌有较强的灭菌功能。
万怡灶(天津大学材料科学与工程学院，天津 300072)
王玉林(天津大学材料科学与工程学院，天津 300072)
董向红(天津大学材料科学与工程学院，天津 300072)
, http://www.100md.com
周福刚(天津大学材料科学与工程学院，天津 300072)
成国祥(天津大学材料科学与工程学院，天津 300072)
温廷益(天津中医学院第一附属医院PCR中心，天津 300193)
韩森(天津大学化工学院一碳化工国家重点实验室，天津 300072)
5 参考文献
1，Avom J, Mbadeam KJ, Noubactep C, et al. Adsorption of melthylene blue from an aqueous solution on to activated carbons from plam-tree cobs. Carbon,1997,35(3):365～369
, 百拇医药
2，Huttepain M, Oberlin A. Microtexture of nongraphitizing carbons and TEM studies of some activated samples. Carbon, 1990,28:103～111
3，Warhurst AM, Mcconnachie GL, Pollard SJ. Characteristation and applications of activated carbon from Moringa oleifera seed husk by single-step steam pyrolysis. Wat Res, 1997,31(6):759～766
4，田本良.碳材料在医药学方面的应用.新型碳材料，1992，7(1)：18～23
5，Harkes G, Feijen J, Dankert J. Adhesion of Escherichia coli on to a series of poly(methacrylates) differing in charge and hydrophobicity. Biomaterials, 1991,12:853～859
, http://www.100md.com
6，Oya A, Yoshida S, Abe Y, et al. Antibacterial activated carbon fiber derived from phenolic resin containing silver nitrate. Carbon, 1993,31(1):71～73
7，Oya A, Wakahara T, Yohsida S, et al. Preparation of pitch-based antibacterial activated carbon fiber. Carbon, 1993,31(8):1243～1247
8，朱征.具有灭菌功能活性碳纤维的研究.离子交换与吸附，1995，11(3)：200～205
9，Oya A, Banse T, Ohashi F, et al. An antimicrobial and antifungal agent derived from montmorillonite. Applied Clay Science, 1991,6:135～142
, 百拇医药
10，Barton AJ, Sagersand RD, Pitt WG. Measurement of bacterial growth rates on polymers. J Biomed Mater Res, 1996,32(2):271～278
11，Chu CC, Tsai WC, Yao JY, et al. Newly made antibacterial braided nylon sutures. J Biomed Mater Res, 1987,21:1281～1300
12，Royle FH, Ratner Jr, BD, Horbett TM. Biomaterials: interfacial phenomena and applications, editored by Copper S L and Peppas N A, American chemical society, Washington DC, 1982,453～462
, 百拇医药
13，贺福，马谦中.活性碳纤维工业的长足发展.新型碳材料，1994，9(1)：11～17
14，Raad I, Hachem R, Zermeno A, et al. In-vitro antimicrobial efficacy of silver iontophoretic cather. Biomaterials, 1996,17(11):1055～1059
15，Aydin M, Gunay I, Pelit A, et al. Deposition profile of antibacterial anodic silver in root canal systems of teeth, J Biomed Mater Res, 1997,38(1):49～54, 百拇医药
测定了活性碳(AC)及载银活性碳(AC(Ag))的比表面积和孔径分布曲线，对比研究了AC及AC(Ag))对大肠杆菌的吸附能力和灭菌性能。结果表明，载银后，虽然AC(Ag)的比表面积下降，但由于银的存在，使其吸附的大肠杆菌数量高于AC，而吸附速率低于AC。灭菌试验表明，AC对大肠杆菌没有杀灭能力，而AC(Ag)对大肠杆菌有较好的灭菌功能。
关键词：活性碳；银；大肠杆菌；灭菌性能；吸附
0 引 言
活性碳(以下简作-AC)比表面积大，吸附性能好，与活性碳纤维相比，其制造工艺比较成熟，价格便宜，因而仍是最广泛使用的工业吸附剂[1]。它可用于废水处理和净化饮用水，作分子筛，制作航天飞机的空气过滤器，用于贵重金属回收等[1～3]。此外，由于AC具有非活性碳相似的结构与性能，也具备一般碳材料的生物相容性和生物化学相容性等[4]，因而也广泛应用于医学领域，如血液过滤等。无论是用于净化水还是用于生物医学工程领域，AC与细菌的生物相容性始终是一个非常重要的参数。在生物医学工程方面，细菌在植入材料上的粘附是导致植入材料伴生感染的主要原因之一[5]，如AC能将粘附其上的细菌杀灭，则可避免此种感染的发生。
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已有研究表明[6，7]，当活性碳纤维应用于净化饮用水时，被吸附的细菌可在其表面生长、繁殖，造成对饮用水的二次污染，为克服这一弊端，采用了含银的活性碳纤维或表面载银的活性纤维[8]。但对AC与细菌作用机制的研究却不多。由于活性碳纤维与AC的性能有着较大的差别，因此，细菌能否在AC上粘附、生长或繁殖也值得研究。
本文以AC及载银活性碳(以下记为-AC(Ag))为研究对象，选择大肠杆菌为代表，并采用“halo”试验法[9]，即抑菌环法对比研究二者对大肠杆菌的作用。由于细菌吸附是细菌与材料作用的第一步[10]，本文首先对二种材料的细菌吸附行为进行了研究。
1 实验材料与方法
1.1 实验材料
本实验所用的AC由山西新华化工厂提供，AC(Ag)由浸渍法获得。
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1.2 菌种及其培养
1.2.1 菌种
大肠杆菌JM109(Escherichia coli JM109)。
1.2.2 培养基
固体培养基(LB培养基)，其组成为(g/L)：蛋白胨10；酵母提取物5；氯化钠10；琼脂粉2。液体培养基的组成为(g/L)：蛋白胨10；酵母粉5；氯化钠10；pH7.4。
1.2.3 培养条件
在950mL去离子水中加入蛋白胨、酵母提取物、氯化钠，摇动容器直至溶质完全溶解，用5mol/L NaOH(约0.2mL)调pH值至7.0，加入去离子水至总体积为1L，加入2g琼脂粉，高压下蒸气灭菌20min，将已灭菌的琼脂培养基冷却到45℃铺平板，然后接种大肠杆菌于固体培养基中。将试样依次放入接种过大肠杆菌的固体培养基表面。放入恒温箱中，恒温(37℃)培养24h。
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1.2.4 大肠杆菌菌液的制备
将接种过大肠杆菌的液体培养基锥形瓶固定在恒温(37℃)摇床上振荡培养24h，经分离提纯后制成大肠杆菌悬浊液。再用缓冲液(18.2g/L NaCl; 3.1g/L Na2HPO4*12H2O;0.2g/L NaH2PO4*2H2O;pH7.4)配制成1010cfu/ml的细菌溶液。
1.3 性能测试与表征
1.3.1 比表面积与孔径分布的测定
比表面积采用ASAP-2400自动物理吸附仪测定。试样在1.33Pa真空条件下于300℃脱气4h，以高纯N2为载气和吸附质，用BET和Langmuir法计算并经计算机处理得到最终结果。
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1.3.2 细菌吸附试验
将相同体积的不同样品放入缓冲液中浸泡，而后依次放入小烧杯中，将细菌悬浊液摇匀，用消毒过的滴管依次滴注于各试样上，每个烧杯内滴20mL，并使各烧杯中的菌液混匀。每隔1h各取出一块试样，先在20%戊二醛液中浸泡片刻，然后分别在30%、50%和100%的丙酮溶液中脱水。表面喷金处理后，用X-650扫描电镜观察细菌的分布并计算单位面积(mm2)吸附的细菌数量，每个试样随机取6个视场计算细菌数量。
1.3.3 灭菌性能
灭菌试验采用“halo”试验法。当试样具有灭菌功能时，将在其周围形成透明环，即抑菌环[10]。样品的灭菌性能由抑菌环的宽度评价[11]。用普通摄相机拍摄抑菌环照片，然后采用JC-2型晶粒度测量仪(×50)测出抑菌环的宽度。为保证数据的准确性，每隔60°在不同的方向对每个抑菌环各测量6次，每种试样各取3～5个样品进行“halo”试验，抑菌环宽度为各样品抑菌环宽度的平均值。
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2 结果分析
2.1 细菌的分布特征
细菌在AC及AC(Ag)表面的分布形态如图1所示。可见，大肠杆菌在AC表面的分布较均匀；而在AC(Ag)表面，大肠杆菌仅分布于银颗粒之间，未见有细菌分布于银颗粒表面，表现为非均匀分布的特征。
图1 大肠杆菌在(a)AC (b)AC(Ag)表面的分布形态
2.2 AC及AC(Ag)的孔结构特征
比表面积的测定结果显示，AC的比表面积为970m2/g，而载银后比表面积下降了39%,为588m2/g。图2是AC及AC(Ag)的孔径分布曲线。可见，AC具有二个极大孔分布，一个位于2.1nm，另一个位于13nm左右；而载银后，AC(Ag)仍具有二个极大孔分布，一个位于1.8nm，另一个峰也位于13nm附近，但不明显。与AC相比，其极值下降了46%。这表明，AC载银后，孔径为13nm左右的孔大部分为银颗粒所堵塞。
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2.3 AC与AC(Ag)对大肠杆菌的吸附动力学
AC及AC(Ag)细菌吸附实验的结果示于图3。可见，AC及AC(Ag)对细菌的吸附作用差别不大，但吸附速率有所不同。AC的吸附速率显著高于AC(Ag)，AC在吸附1h后，其大肠杆菌吸附量就达到平衡吸附量的80%以上，2h后就达到吸附平衡状态；而AC(Ag)1h后的吸附量为40%左右，2h后还不到70%，3h后才开始趋向平衡。此外，二者的平衡吸附量也存在区别，AC的平衡吸附量约为4.5×105cfu/mm2,而AC(Ag)的平衡吸附量为5.3×105cfu/mm2。
图2 AC及AC(Ag)的孔径分布曲线
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图3 细菌吸附数量与吸附时间的关系曲线
2.4 灭菌性能
灭菌试验的结果示于图4。其中图4(b)为AC(Ag)试样的抑菌环照片，图中明显可见试样周围的抑菌环，其平均宽度为1.36mm,其余为细菌正常生长的部分，表明AC(Ag)具有较强的灭菌功能。而AC试样的周围未见有抑菌环(如图4(a)所示)，AC周围的细菌可正常生长。
图4 AC(a)及AC(Ag)(b)的抑菌环照片
3 讨论
固体材料对细菌的吸附与材料的亲水性/疏水性、表面电荷、表面化学成分和表面形态有关[12]。而作为吸附材料，影响最显著的因素是比表面积。AC与AC(Ag)相比，其亲水性、表面成分(不包括Ag)和表面形态相差不大，而且，载银过程也不改变原始AC的结构参数。但AC表面载银后，其比表面积大幅度下降，从孔径分布结果看，载银后，孔径为13nm的孔多数被银颗粒所堵塞，而正是这种尺寸的孔最适于吸附微生物[13],这似乎意味着，AC所吸附的大肠杆菌数量应多于AC(Ag)(这种吸附可称之为物理吸附，其吸附的细菌数量随比表面积的增大而增加)。实测的结果并非如此，AC(Ag)的平衡吸附量反而高于AC。这是由于AC(Ag)表面带正电，而大肠杆菌带负电[5]，因此，除了物理吸附外，AC(Ag)还存在对大肠杆菌的化学吸附，这样就使其吸附的大肠杆菌数量增加，并超过AC所吸附的细菌数量。此外，二者在吸附动力学上的差别，说明化学吸附比物理吸附需要更长的时间才能达到平衡。
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灭菌实验结果表明，未载银的AC对大肠杆菌没有杀灭能力，只有当其表面载银以后才具备灭菌功能。银的灭菌性能与它对细胞表面或DNA分子的作用有关，银离子会与细胞膜和细胞壁结合，从而减少或终止DNA、RNA和蛋白质的合成；银离子也可以取代DNA分子中的氢键而导致DNA分子中双螺旋结构的畸变，最终使细菌不能存活[11]。
虽然AC也对大肠杆菌有吸附作用，能将大肠杆菌吸附于表面，但因其良好的生物相容性，被吸附在表面的细菌仍然可以正常生长，而不会遭受破坏。由此可知，AC(Ag)的灭菌能力来源于银，确切地说来源于银所释放的银离子，这一点已为许多实验所证实[11，14]。可以认为，AC(Ag)的灭菌机制体现在两个方面。首先，AC(Ag)对细菌有吸附作用(包括物理吸附和化学吸附)，使得大肠杆菌与银直接接触而被杀灭；其次，由于AC(Ag)表面的银释放银离子，而银离子具有很强的渗透能力[15]，因而可向周围扩散，使得与银离子接触的细菌死亡。对AC(Ag)来说，吸附数量的增加将有助于提高其灭菌功能，而AC(Ag)的吸附能力与银含量和原始比表面积等因素有关。因此AC(Ag)最终的灭菌功能也与银含量及AC的原始表面积有关。
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4 结论
(1)AC载银后，其比表面积显著下降，孔径分布发生变化，多数最适于吸附细菌的孔(孔径为13nm左右)被银颗粒所填塞，使AC(Ag)的物理吸附作用下降。
(2)AC及AC(Ag)均对大肠杆菌有较强的吸附能力，AC对大肠杆菌的吸附为物理吸附，其吸附速率较快；AC(Ag)对大肠杆菌既有物理吸附又有化学吸附，使其平衡吸附量高于AC。
(3)AC对大肠杆菌没有杀灭能力，AC(Ag)对大肠杆菌有较强的灭菌功能。
万怡灶(天津大学材料科学与工程学院，天津 300072)
王玉林(天津大学材料科学与工程学院，天津 300072)
董向红(天津大学材料科学与工程学院，天津 300072)
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周福刚(天津大学材料科学与工程学院，天津 300072)
成国祥(天津大学材料科学与工程学院，天津 300072)
温廷益(天津中医学院第一附属医院PCR中心，天津 300193)
韩森(天津大学化工学院一碳化工国家重点实验室，天津 300072)
5 参考文献
1，Avom J, Mbadeam KJ, Noubactep C, et al. Adsorption of melthylene blue from an aqueous solution on to activated carbons from plam-tree cobs. Carbon,1997,35(3):365～369
, 百拇医药
2，Huttepain M, Oberlin A. Microtexture of nongraphitizing carbons and TEM studies of some activated samples. Carbon, 1990,28:103～111
3，Warhurst AM, Mcconnachie GL, Pollard SJ. Characteristation and applications of activated carbon from Moringa oleifera seed husk by single-step steam pyrolysis. Wat Res, 1997,31(6):759～766
4，田本良.碳材料在医药学方面的应用.新型碳材料，1992，7(1)：18～23
5，Harkes G, Feijen J, Dankert J. Adhesion of Escherichia coli on to a series of poly(methacrylates) differing in charge and hydrophobicity. Biomaterials, 1991,12:853～859
, http://www.100md.com
6，Oya A, Yoshida S, Abe Y, et al. Antibacterial activated carbon fiber derived from phenolic resin containing silver nitrate. Carbon, 1993,31(1):71～73
7，Oya A, Wakahara T, Yohsida S, et al. Preparation of pitch-based antibacterial activated carbon fiber. Carbon, 1993,31(8):1243～1247
8，朱征.具有灭菌功能活性碳纤维的研究.离子交换与吸附，1995，11(3)：200～205
9，Oya A, Banse T, Ohashi F, et al. An antimicrobial and antifungal agent derived from montmorillonite. Applied Clay Science, 1991,6:135～142
, 百拇医药
10，Barton AJ, Sagersand RD, Pitt WG. Measurement of bacterial growth rates on polymers. J Biomed Mater Res, 1996,32(2):271～278
11，Chu CC, Tsai WC, Yao JY, et al. Newly made antibacterial braided nylon sutures. J Biomed Mater Res, 1987,21:1281～1300
12，Royle FH, Ratner Jr, BD, Horbett TM. Biomaterials: interfacial phenomena and applications, editored by Copper S L and Peppas N A, American chemical society, Washington DC, 1982,453～462
, 百拇医药
13，贺福，马谦中.活性碳纤维工业的长足发展.新型碳材料，1994，9(1)：11～17
14，Raad I, Hachem R, Zermeno A, et al. In-vitro antimicrobial efficacy of silver iontophoretic cather. Biomaterials, 1996,17(11):1055～1059
15，Aydin M, Gunay I, Pelit A, et al. Deposition profile of antibacterial anodic silver in root canal systems of teeth, J Biomed Mater Res, 1997,38(1):49～54, 百拇医药