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编号:10398622
C肽对人脐静脉内皮细胞体外表达eNOS的影响
http://www.100md.com 《中华医学研究杂志》 2003年第11期
     【摘要】 目的 探讨C肽对人脐静脉内皮细胞(HUVEC)表达内皮型一氧化氮合酶(eNOS)的影响。方法 将培养成功的HUVEC在不同浓度的C肽(0.1ng/ml、10ng/ml、100ng/ml)下孵育48h,提取细胞总RNA,应用半定量逆转录聚合酶链反应(SQ-RT-PCR)法,检测eNOS表达的情况。结果 低浓度的C肽(1ng/ml)使eNOS的表达减弱(P<0.01);生理浓度的C肽(10ng/ml)和高浓度的C肽(100ng/ml)均可使eNOS的表达明显增强(P<0.01)。结论 HUVEC可以对C肽的刺激产生反应,说明它是C肽作用的靶细胞,这为体外研究C肽在糖尿病大血管病变中的作用创造了条件。

    关键词 C肽 人脐静脉内皮细胞 内皮型一氧化氮合酶

    【文献标识码】 A 【文章编号】 1680-6115(2003)11-0961-02

    Effects of C-peptide on expression of eNOS in cultured
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    human umbilical vein endothelial cells

    Meng Dong,Yu Demin,Chen Ying

    Tianjin Medical University Metabolic Disease Hospital,Tianjin300070.

    【Abstract】 Objective To investigate the effects of C-peptide on expression of eNOS in cultured HUVECs.Methods Using semi-quantitative RT-PCR techniques,we measured the expression of eNOS mRNA in HUVECs incubated for48h at0,1,10,100ng/ml concentrations of C-peptide.Results The expression of eNOS mRNA at low concentration of C-peptide was lower than that of control group,the expressions of eNOS mRNAwere higher at physiˉological and higher concentration of C-peptide,but there was no difference between physiological and higher concenˉtration of C-peptide.Conclusion HUVECs are the perfect target cells of C-peptide study and may provide experiˉmental materials for study of C-peptide in vitro.
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    Key words C-peptide human umbilical vein endothelial cell(HUVEC) endothelial nitric oxide synthase(eNOS)

    血管内皮细胞功能改变是糖尿病血管病变的始发事件 [1] ,如何改善糖尿病血管机能,成为许多学者研究的关键问题。近年来随着对C肽研究的不断深入,它所具有的生理作用已在人和动物实验中得到充分证实 [2] 。C肽是否能通过内皮型一氧化氮合酶(eNOS)途径对糖尿病血管病变产生影响,目前国内外还未见相关报道。本研究在成功建立人脐静脉内皮细胞(Human Umbilical Vein Endothelial Cell;HUVEC)体外培养的基础上,将传代培养的HUVEC分别在不同浓度的C肽中孵育48h,观察其eNOS表达情况,探讨C肽能否通过eNOS-NO途径对内皮细胞发生作用。

    1 材料与方法
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    1.1 材料

    1.1.1 细胞分离和传代试剂 DMEM培养基(5.5mM葡萄糖)、青/链霉素(100×)、0.25%糜蛋白酶+1mM EDTA、10×PBS均为美国GIBCO公司产品,胎牛血清(FBS)为美国Hyˉclone公司产品,Ⅱ型胶原酶、DEPC、内皮细胞生长因子(ECGF)均为美国Sigma公司产品。

    1.1.2 eNOS表达测定用试剂 TRIZOL总RNA分离试剂(美国Promega公司),RT-PCR试剂盒(美国LIFE TECHˉNOLOGIES公司),琼脂糖(上海生工公司),PCR试剂盒(Preˉmix Taq)、125bp DNA Ladder Marker均为大连宝生物工程 公司产品。

    1.2 方法

    1.2.1 人脐静脉内皮细胞的分离、传代培养 [3] 在无菌条件下,于健康产妇分娩后立即取新生胎儿脐带。冲洗脐带至无血色液体流出。以0.1%的Ⅱ型胶原酶溶液,37℃水浴消化10min,收集消化细胞,移入培养皿中培养(37℃,5%CO 2 条件下)24h,然后洗去未贴壁细胞及杂质,加入细胞生长液(含有终浓度为200ng/ml的内皮细胞生长因子和终浓度为100μg/ml的肝素),以后每隔3~4天换液一次。原代内皮细胞融合60%~80%后,加入0.25%胰蛋白酶+1mM EDTA溶液,500μl/培养皿,进行消化。收集、重悬细胞,反复吹打制成单细胞悬液,以血细胞计数板进行细胞计数,调整细胞浓度为2.0~5.0×10 5 /ml,以5.0×10 4 /cm 2的密度接种,继续培养。取3~4代细胞用于实验。传代细胞经倒置显微镜观察细胞的形态,Ⅷ因子相关抗原免疫荧光检测 [4] 鉴定为HUVEC。
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    1.2.2 实验分组 实验分为对照组(C0)、低于基础生理浓度组(C1)、正常生理浓度组(C10)和高于基础生理浓度组(C100),C肽终浓度分别为0、1ng/ml、10ng/ml、100ng/ml。将生长良好的内皮细胞以2.5×10 5 /ml接种于6孔板,2ml/孔,待细胞形成单层近融合后,换以细胞维持液培养24h,然后加入实验用液刺激48h。每组设平行孔3孔。

    1.2.3 eNOS表达测定 用TRIZOL总RNA分离试剂提取细胞RNA,用SQ-RT-PCR法 [5] 对eNOS表达进行检测(美国LIFE TECHNOLOGIES公司RT-PCR试剂盒进行逆转录,大连宝生物工程公司Premix Taq PCR试剂盒扩增DNA,以GAPDH为内参照,见表1)。eNOS表达产物电泳结果用紫外凝胶摄像分析仪(UVPGDS-8000)进行观察,拍照后分析反应结果。

    表1 扩增基因的引物序列
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    1.2.4 统计学方法 以SPSS10.0软件进行统计学分析。组间的两两比较用SNK-q检验。所有数据均以ˉx±s表示,以P<0.05为差异有显著性。

    2 结果

    3组实验组及对照组eNOS表达产物电泳结果见图1,半定量分析结果见表2。

    图1 4组HUVEC表达eNOS的电泳结果略

    表2 不同浓度4组C肽影响HUVEC表达eNOS的结果比较略

    3 讨论

    近年来,一系列基础与临床研究都显示了C肽具有重要的生理功能 [2] 。但是C肽对靶细胞发挥作用的机制尚不清楚。有研究发现:内皮型eNOS介导了C肽的某些作用 [6] ,而eNOS是血管内皮细胞产生NO的主要限速因素。 另据报道 [7] :糖尿病患者大血管内皮eNOS表达及活性的异常,是导致糖尿病大血管病变的重要原因。
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    我们选择HUVEC为研究对象,是因为HUVEC在某些方面尚具有与动脉生物学特征相似的优点,而且与动物血管内皮细胞相比,可使实验条件和所获结果更符合人体情况。我们在实验中发现:低于生理浓度的C肽使eNOS的表达减弱。作为NO的主要限速酶,eNOS表达的减弱使NO产生减少,正常情况下,内皮细胞释放的NO具有重要的血管保护作用,这意味着低浓度的C肽削弱了NO的血管保护作用。在1型糖尿病患者中,血浆C肽水平的下降是否与1型糖尿病的血管损伤有关,还有待进一步证实。

    作为一种生物活性物质,C肽具有与特异性受体结合的特点 [8] 。但有学者在C肽与细胞膜结合的研究中发现,HUVEC不与C肽结合,这意味着HUVEC表面没有C肽的受体,因而推测HUVEC对C肽的刺激没有反应。我们实验显示:C肽能够引起HUVEC表达eNOS的变化,说明HUVEC对C肽的刺激有反应,推测C肽的这种作用可能是通过非受体机制实现的。Schlesinger等的研究表明C-肽可能通过形成离子通道,改变细胞内的离子稳态发挥效应 [9]
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    本研究在成功建立HUVEC体外培养方法的基础上,证实了HUVEC可以对C肽的刺激产生反应,说明它是C肽作用的靶细胞,这为进一步研究C肽在糖尿病大血管病变中的作用创造了条件。

    参考文献

    1 Calles-Escandon J,Cipolla M.Diabetes and endothelial dysfunction:a clinical perspective.Endocr Rev,2001,22(1):36-52.

    2 Wahren J.Role of C-peptide in human physiology.Am J Physiol Enˉdocrinol Metab,2000,278:759-768.

    3 Lorenzi M,Cadliero E,Markey B,et al.Interation of human endothelial cells with elevated glucose concentrations and native and plycosylated low density lipoprotein.Diabetologia,1984,26:218.
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    4 Q R Yang,D Vanden Berghe.Effect of temperature on in vitro proliferaˉtive of human umbilical vein endothelial cells.Experientia,1995,51:126-132.

    5 S Santagati,M Garnier,P Carlo,et al.Quantitation of low abundence mRNAs

    in glial cells using different polymerase chain reaction(PCR-base methods.Brain Research Protocol,1997,217-223.

    6 Lindon H Yong,Yasuhiko Ikeda,Rosario Scalia,et al.C-peptide exerts card
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    ioprotective effects in myocardial ischemia-reperfusion.Am J Physˉiol Heart Circ Physiol,2000,279:1453-1459.

    7 Yaoxian Ding,Nosratola D Vaziri,Richard Coulson,et al.Effects of stimulated hyperglycemia,insulin,and glucagon on endothelial nitric oxˉide synthase expression.Am J Endocrinol Metab,2000,279:11-17.

    8 T Kitamura,K Kimura,BD Jung,et al.Proinsulin C-peptide rapidly stimulates mitogen-activated protein kinases in Swiss3T3fibroblasts:requirement of protein kinase C,phosphoinostitide3-kinase and pertusˉsis toxin-sensitive G-protein.Biochem J,2001,355:123-129.

    9 Schlesinger PH.Conductive channel properties of human C-peptide inˉcorporated into planar lipid bilayers.Diabetes,1998,47(1):29.

    基金项目:天津医科大学基金资助项目(编号:2002KY28)

    作者单位:300070天津医科大学代谢病医院

    (收稿日期:2003-08-03)

    (编辑 李年令), http://www.100md.com(孟东)