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关键词：尿流改道；电解质
【摘要 】 目的 为临床尿流改道选择肠道提供理论基础。方法 将人工尿液注入活体小猪的游离盲结肠及末段回肠，至肠腔内压相同，留置5小时后取出进行电解质测定。结果 末段回肠吸收K+ 、Cl- 、BUN、Cr、Glu及分泌HCO- 3 比盲结肠分别多66.7%，46.7%，51.2%，136.1% ，242.9%及796.7%。结论 末段回肠吸收尿液中K +、Cl- 、BUN、Cr、Glu及分泌HCO- 3 比盲结肠多，认为尿流改道选用盲结肠可减少重吸收方面的并发症。
An experimental study on the reabsorptionof urine electrolytes in di fferent intestinal reservoirs
ZHOU Xiangfu， MEI Hua，LU Minhua，et al.Department of Urology，the Third AffiliatedHospital，Sun Yat-sen University of Medical Sciences，Guangzhou 510630
【Abstract 】 Objective Tostudy the reabsorption of urin e electrolytes as to provide a theoretical basis forclinical use of the intes tinal tract in the construction of urinary reservoir. Methods Artificialurine was instilled into cecum-ascending colon urine reservoir s and into terminal ileumreservoirs created in baby pigs until the intrareservo ir pressure reached the samerequired level.5 hours later,the urine specimens we r e collected for electrolyte studies. Results Reabsorption of K+ , Cl- , BUN, Cr, Glu and HCO- 3 secretionwas 66.7%,46.7%,51.2%,136 .1%,242.9% and 796.7% more in the ileum than in thececum-asending colon. Conclusions Cecum-asending colon seems to bebetter than il eum so as to lessen electrolyte reabsorption and complications.
【Key words 】 Urinary diversion Electrilyte
为了了解回肠与盲结肠对尿液中主要电解质成分的吸收情况，为临床尿流改道选择肠道提供理论基础，我们设计了在活体小猪的末段回肠与盲结肠分别注入同样浓度的人工尿液，观察比较两者对尿液中电解质吸收情况。报告如下。
资料与方法
健康杂种猪20头，不分雌雄，平均体重(16.2±3.5)kg。
人工尿液中电解质浓度根据正常人尿液中电解质浓度[1] 而设定。配成的人工尿液中含Na+ 150mmol/L，Cl- 152mmol/L，K+ 30mmol/L，Ca++ 3mmol/L，Mg++ 3mmol/L，尿素300mmol/L，葡萄糖(Glu) 0.5g/L，HCO- 3 10mmol/L，H2 PO- 4 30mmol/L。渗透压为676.78mOsm/L(正常人尿液渗透压一般为600～1000mOsm /L)。为了防止人工尿液中物质互相结合沉淀，而采取配成A液(含CaCl2 、MgCl2 、NaCl、尿素及葡萄糖)及B液(含NaHCO3 及KH2 PO4 )两种，用时按比例混合后注入肠管中。
采用3%戊巴比妥钠间歇静脉注射维持麻醉，应用5%葡萄糖溶液静脉滴注维持补液。正中切口剖腹，分别游离出末段回肠(23.4±6.6)cm及盲结肠(9.5±2.2)cm各一段(保持血液供应)，冲洗干净后分别注入人工尿液，使腔内压均为5cmH2 O(1cmH2 O=0.098kPa),留置5小时取出。连同临用时混合配制并放置5小时的人工尿液、术前静脉血及猪的尿液同时在Beckman生化仪上进行电解质浓度测定。
结 果
实验动物的尿液渗透压为(728.8 ±129.2)mOsm/L。尿液主要成分为Na+ (72.4±40.5)mmol /L，K+ (60.4±16.0) mmol/L， Cl- (78.0±15.3)mmol/L，BUN(尿素氮)(364.1±70.7)mmol/L，Cr(肌酐)>23080μmol/L， Glu(2.9±0.4 )mmol/L，HCO- 3 <5 mm ol/L。
实验动物术前静脉血及人工尿液电解质浓度和人工尿液贮留末段回肠及盲结肠5小时后电解质浓度见表1。从表中可见实验动物术前静脉血电解质浓度及渗透压与正常人血电解质及渗透压浓度一致。人工尿液贮留末段回肠及盲结肠5小时后取出测得电解质浓度除HCO- 3 较未贮留人工尿液电解质浓度升高外，其余均降低。采用Wilcoxon方法进行统计学检验，末段回肠与盲结肠均具有吸收Na+ 、K+ 、Cl- 、BUN、Cr、Glu及分泌HCO- 3 作用(P值均<0.01)，两者对Na+ 的吸收无统计学差异(P>0.05)，其余差异均具有显著性(P值均<0.01)，即回肠吸收K+ 、Cl- 、BUN、Cr及Glu均比盲结肠吸收多，分别多66.7%，46.7%，51.2%，136.1% 及242.9%，回肠分泌HCO- 3 比盲结肠多796.7%。
表1 血及人工尿液电解质浓度和回、结肠吸收人工尿液电解质比较(±s)
| 电解质 | 静脉血 (术前) | 人工尿液 | 回肠人工尿液 | 盲结肠人工尿液 |
| Na+ | 144.3±1.6 | 144.5±6.0 | 106.5±13.3 | 107.6±17.0 |
| K+ | 4.9±0.4 | 33.0±6.0 | 16.0±3.9 | 22.8±3.8 |
| Cl- | 108.2±2.2 | 150.9±8.7 | 72.4±12.0 | 9 7.4±15.4 |
| BUN | 5.9±3.2 | 340.3±104.9 | 118.5±89.3 | 193.6±139.0 |
| Cr | 93.7±16.0 | 60.8±33.8 | 29.4±17.6 | 47.5±22.5 |
| Glu | 4.0±1.5 | 2.5±0.6 | 0.1±0.1 | 1.8±1.7 |
| HCO- 3 | 28.4±4.5 | 13.7±4.7 | 40.6±9.8 | 16.7±6.4 |
讨 论
肠道粘膜上皮有独特的吸收及分泌功能，若用作尿流改道有可能引起电解质代谢失调、知觉损害、肝代谢改变、药物代谢异常，感染、结石形成、营养失调、生长发育延迟及骨软化等并发症发生[2] 。其中许多并发症的发生取决于肠道吸收尿液中溶质的多少。而影响尿液中溶质吸收的因素除了尿液溶质的浓度、肾功能、PH及尿液渗透压外，还有肠道部位，贮尿囊的肠道长度，尿液在贮尿囊内贮存的时间[2] 。
我们参照可控膀胱一般每4～6小时排空一次的规律，设计了人工尿液在动物一定容量的肠管内贮留5小时，测定贮留前后“尿液”电解质浓度。研究结果显示除回肠与盲结肠吸收Na+ 无明显差异以外，对K+ 、Cl- 、BUN、Cr、Glu的吸收及分泌HCO- 3 差异均具有显著性。这不仅与回肠及结肠的机能有关外，而且还与它们的组织结构有关：小肠具有环行皱壁、绒毛 及微绒毛结构，这些结构使小肠粘膜上皮表面积增大了约600倍；而结肠无绒毛结构，其皱壁与微绒毛远不如小肠发达。小肠粘膜上皮属于漏流上皮(leakyepithelia),对小离子的通透性高；而结肠上皮属于中漏上皮，细胞间紧密连接较多，对离子的通透性很低[3] 。
Koch等[4] 在兔动物实验证实结肠贮尿囊吸收酸及分泌碱较回肠少。Castro等 [5] 报道回肠是引起高氯性酸中毒的主要肠段，回肠膀胱患者代谢性酸中毒发生率可高达 70%，10%的回肠膀胱患者需要药物治疗明显的持续性酸中毒[6] 。在常规随访过程中，电解质正常者约有20%周期性发作高氯性代谢性中毒[7] ，而结肠膀胱发生酸中毒只有10%～15%[2] 。本研究结果表明，回肠对尿液中的Cl- 吸收是盲结肠的1.47倍以 上，小肠分泌HCO- 3 较大肠多796.7%,也反映了回肠膀胱与结肠膀胱酸中毒发生率的高低。回肠与结肠均吸收K+ ，但主要在小肠。此外，我们还发现回肠较盲结肠吸收尿中BUN及Cr多，这无疑增加了血中毒性物质的积累，也加重了肾脏的负担。
尽管本研究结果来自于动物实验，实验动物尿液中Na+ 、K+ 、Cl- 、Cr、HCO- 3 的浓度及尿液渗透压与人工尿液有差距，但由于实验动物血液电解质浓度及渗透压与人相似，人工尿液电解质浓度在正常人尿液电解质浓度范围内，故仍不失为我们在尿流改道中选择什么部位的肠道提供了理论基础。我们认为在尿流改道中作贮尿囊选用盲结肠较回肠好，可以减少对尿液中电解质及毒性物质的重吸收，从而可减少尿流改道术后电解质失衡等并发症。
本课题受广东省科技重点攻关项目基金资助(A212)
参考文献
11 廖二元，魏启动主编.最新临床检验手册.第1版.长沙：湖南科学技术出版社，1992，368-384.
2 Mcdougal WS. Metabolic complications of urinary intestinal diversion. J Urol ，1992,147∶1199-1208.
3 Fromter E. Route of passive ion permeatin in epithelia. Nature, 1972,135∶9- 14.
4 Koch MO,Gurevitch E, Hill DE, et al. Urinary solute transport by intestinal segments:acomparative study of ileum and colon in rats. J Urol，1990,143∶1275 -1279.
5 Castro JE,Ram MD. Electrolyte imbalance following ileal urinary diversion . Br JUrol,1970,42∶29-36.
6 Schmidt JD, Hawtrey CE, Flocks RH，et al. Complications,result and problems o f ilealconduit diversions. J Urol,1973,109∶210-215.
7 McDougal WS,Koch MO. Impaired growth and development and urinary intestin alinterposition. Trans Amer Ass Genito-Urin Surg, 1991,105∶3-7.
(收稿：1998-11-02 修回：1999-06-28)
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