唾液量的检测
作者：赵竹陶 王松灵 朱宣智
单位：100050 北京口腔医院放射科；赵竹陶 王松灵(现在北京解放军总医院口腔科)，颌面外科(朱宣智)
关键词：
中华口腔医学杂志/980522 唾液分泌的研究是唾液腺功能的基础研究，也是涉及口腔生理、生化、微生物及临床等多学科的基础研究。我们对唾液的收集方法、生理状态及病理状态下唾液的分泌情况进行了综述。
一、唾液的收集方法
唾液收集分全唾液收集和单个腺体的唾液收集。收集应在早晨、空腹、安静房间里进行，采用坐位。不同日期对同一患者的连续收集，应在同一环境、同一时间内进行，以避免环境及昼夜生理节律的影响[1，2]。
(一)常用收集方法
, http://www.100md.com
1. 静态唾液总流率的测定[3]：①滴取法(draining)：手持带漏斗的试管，使唾液沿下唇逐渐滴入试管，结束时受试者将口内剩余唾液全部吐入试管。②吐取法(spitting)：使唾液在口底聚集，受试者每隔60 s将其吐入试管，一般收集10 min。③吸引法(suction)：用真空吸引器将唾液自口底持续吸入试管，吸引头置于舌下，结束时用吸引头环绕口腔前庭及口底一周，吸取剩余唾液。④棉棒法(swab)：将大小约0.2 cm×0.6 cm的棉棒预先称重，置于口内各大涎腺开口处，收集结束后重新称重。
2.动态唾液总流率的测定：①酸刺激法: 将0.1 mol/L的枸椽酸滴于舌背前部或直径约2.0 cm的滤纸上，置于舌背前1/3，隔1 min更换1次[3]。②咀嚼刺激法：将1 g胶姆以20次/min的频率咀嚼10 min[3]或温水泡软5 g医用白蜡，咀嚼6 min[4]。③方糖法(fabertest): 取1.5 cm×1.5 cm的方糖放于舌背，在正常分泌情况下，15～30 min后方糖全部溶解，否则为分泌功能低下[5]。
, 百拇医药
附表 健康人唾液流率测定方法及参考值 测定项目
测定方法
测定值
例数
滴取法
0.47±0.06g/min
17
静态唾液
吐取法
0.46±0.05g/min
17
总流率
, 百拇医药
吸引法
0.54±0.12g/min
17
(Navazesh[3])
棉棒法
0.52±0.08g/min
17
酸刺激(Navazesh[3])
2.64±0.22g/min
17
动态唾液
, 百拇医药
咀嚼胶姆(Navazesh[3])
2.38±0.52g/min
17
总流率
咀嚼白蜡(王松灵[10])
4.12±2.24ml/6min(3～5岁)
30
6.84±2.76ml/6min(6～10岁)
30
咀嚼白蜡(邹兆菊[4])
, 百拇医药 9.90±4.49ml/6min(11～15岁)
30
>6ml/6min(成人)
-
腮腺流率
静态
0.01～0.07ml/min
-
(Edgar[13])
酸刺激
0.7～2.3ml/min
-
, 百拇医药
颌下腺流率
静态
0.02～0.20ml/min
-
(Edgar[13])
酸刺激
0.4～1.3ml/min
-
3.单独腺体的唾液收集：①腮腺：用Lash ley cup或modified Carson-Critteden device收集。为一带有内腔和外腔的塑料或金属杯，内腔通过塑料管道输送唾液至收集器，外腔连接负压吸引装置，使用时将杯子放在导管口上[1]。②颌下腺与舌下腺：常通过Wharton's导管共同开口于口腔，所以通常将其分泌物收集在一起。插管法：将一支一端渐细的聚乙烯管插入导管口收集[1]；或隔离法：用棉卷将双侧腮腺导管口挡住，将Wharton's导管口隔离，使其分泌物集中于口底，用微吸量管以轻吸法收集[6]。
, 百拇医药
4. 小涎腺分泌物的收集：利用色层分析纸收集。将待测区粘膜擦干，将色层分析纸条(6 mm×16 mm)贴于粘膜上，2 min后用湿度仪测其含水率[7]。
(二)常用测定方法的正常参考值
19世纪末,随着“口干”概念的提出,以测定唾液流率评价涎腺功能的研究逐渐展开, 至1967年开始将其标准化。Bertam(1967)认为静态唾液流率(unstimulated whole, UW)在0.2～0.9 ml/ 15min时为涎腺功能低下。Christensen(1986)发现健康成人(18～35岁)中20%的人UW低于0.2 ml/min，Navazesh等[8](1992)基于Christensen的研究，提出UW等于0.12 ml/min为正常最低值。UW的正常界限值变动范围较大。例如酸刺激腮腺流率(acid stimulate parotid, ASP)，Mason(1967)提出正常最低限为0.50毫升/ 分*腮腺，但Daniels(1984)发现即使以ASP 0.40毫升/分*腮腺为正常最低界值也不能全部查出经活检证实的功能低下者。Navaxesh(1992)以ASP低于0.30毫升/分钟*腮腺作判定标准，效果亦不佳[8]。
, 百拇医药
小涎腺分泌量不到唾液总量的10%[2]，唇、颊、腭腺的流率各不相同，但左右对称，颊腺流率最高。小涎腺分泌量不随酸刺激而上升，且有时下降。无论静态或动态测定，小涎腺流率都不随唾液总流率的波动而变化[7]。总之，小涎腺倾向于保持一恒定分泌量，以保护口腔软硬组织。一些研究者的唾液流率测定方法及正常参考值详见附表。
(三)常用测定方法的比较及其意义
在静态唾液总流率的测定方法中，吐取法和滴取法较常用，吸引法和棉棒法会产生一定程度的刺激，现已不提倡[1]。一般认为，静止唾液流率反映涎腺基础状况下的分泌情况。在动态唾液总流率的测定中，酸刺激法会影响某些分析结果，咀嚼白蜡法不影响成分分析，但难以保持恒定的咀嚼力[1]。一般认为，动态唾液流率反映了涎腺的贮备功能。单独腺体的唾液收集方法复杂，不能反映所有涎腺的总的分泌状况，评价整个涎腺功能时也有局限性，但测定唾液成分时因其污染少而被采用。
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二、涎腺在生理状况下的分泌
1.唾液流率与生理节律：正常人每日分泌600 ～700 ml唾液，大部分人一天内静止唾液流率的峰值大约在下午5时，夜间流率最小。唾液分泌量也随季节变化而不同，冬季分泌量达高峰[1,2]。
2.唾液流率与年龄、性别：随着儿童的生长发育，其静态唾液流率[9]、动态唾液流率[10]均有增长趋势，提示涎腺分泌功能随发育而逐渐提高。成人静态唾液流率随年龄增长呈下降趋势[11]，但动态唾液流率不随年龄增长而下降，甚至有时上升[12]。女性无论静态或动态，平均流率均低于男性[11]。
3.唾液流率与生理刺激：①咀嚼运动刺激：咀嚼无味团块可刺激位于咀嚼肌、颞下颌关节、牙周韧带和粘膜上的受体，进而刺激涎核，增加副交感神经的分泌[13]。②味觉刺激：最有效者为酸刺激，余者依次为甜、咸和苦[13]。③嗅觉刺激：嗅觉可使颌下腺分泌增多，但与腮腺分泌无关。
, 百拇医药
4.唾液流率与其他因素：①机体水合作用：体液丢失8%可导致唾液分泌中止[13]。②体位：立、坐、卧位的唾液流率依次减低[1]。③光线和清醒状态：在黑暗中或在睡眠期间唾液流率明显下降[13]。④运动和精神压力：剧烈的运动或精神压力均可导致唾液流率下降，这可能是下丘脑中枢对涎核的抑制作用[14]。
三、涎腺在病理状态下的分泌
1.舍格伦综合征(Sjogren syndrome, SS)：涎腺分泌功能低下是SS的临床特征，其主要原因可能是由于淋巴细胞浸润,并伴有腺泡细胞变性萎缩和导管破坏。 Fox等[15]将静止唾液总流率低于1.5 ml/15 min作为判断唾液分泌减低，诊断SS的标准之一。王松灵[10]在SS诊断标准中，以上午空腹咀嚼医用白蜡5g、6min，低于6 ml/6min为异常减低。
, 百拇医药
2.药物引起的口干： 有些药物可以减少唾液分泌，例如抗胆碱能药阿托品、抗精神病药苯妥英钠、利尿剂、抗组织胺剂及某些抗高血压药等[13]。由于药物在机体内代谢的变化及药物间相互作用的复杂性，药物影响涎腺分泌功能的准确机制尚不能肯定。目前认为可能的途径有：①模拟自主神经作用。②直接作用于唾液的细胞合成阶段。③改变体液、电解质平衡或破坏腺体、影响腺管或导管再吸收功能，从而间接影响唾液分泌[16]。
3.放疗后口干：腮腺(浆液性腺体)对射线最敏感，其次是颌下腺，舌下腺敏感性最小[17]。放疗后，唾液总流率显著下降，但过一段时间可以有所恢复，恢复程度与接受放疗的剂量及区域有关[18]。
4.高血压：未经药物治疗的高血压患者，其腮腺刺激流率与正常人无异；而用药后患者腮腺刺激流率下降，这可能与降压药的作用有关[19]。
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5.糖尿病：多数研究表明，糖尿病若能得到较好控制，例如注射胰岛素，口服降糖药或控制饮食，患者涎腺功能则无明显减弱[20]。
参考文献
1 Navazesh M. Methods for collecting saliva. Ann N Y Acad Sci, 1993, 694: 72-77.
2 Screeby LM. Recogonition and treatment of salivary induced conditions. Int Dent J, 1989, 39:197-204.
3 Navazesh M, Christensen CM. A comparition of whole mouth resting and stimulated salivary measurement procedures. J Dent Res, 1982, 61: 1158-1162.
, http://www.100md.com
4 Wang SL, Zou ZJ, Yu SF, et al. Recurrent swelling of parotid gland and sjogern syndrome. Int J Oral Maxillofacial Surg , 1993, 22: 362-365.
5 张锡泽，邱尉六，主编. 口腔颌面外科学. 北京: 人民卫生出版社，1982.43.
6 Fox PC, Van Der Ven PF, Sonies BC, et al . Xerostomia: evaluation of a symptom with increasing significance. J Am Dent Associ, 1985, 10:519-525.
7 Shern RJ, Fox PC, Cain JL, et al. A method for measuring the flow of saliva from the minor salivary glands. J Dent Res, 1990, 69: 1146-1149.
, 百拇医药
8 Navazesh M, Christensen C, Brightman V. Clinical criteria for the diagonosis of salivary gland hypofunction. J Dent Res, 1992, 71: 1363-1369.
9 Watannbe S, Dawes C. Salivary flow rates and salivary film thickness in five-year-old children. J Dent Res, 1990, 69: 1150-1153.
10 王松灵, 邹兆菊, 龙珠. 正常儿童唾液总量和唾液免疫球蛋白. 中华口腔医学杂志, 1990, 25:288-290.
11 Percival RS, Challacombe SJ, Marsh PD. Flow rates of resting whole and stimulated parotid saliva in relation to age and gender. J Dent Res, 1994, 73:1416-1420.
, 百拇医药
12 Navazesh M, Mulligan RA, Kipnis V. Comparition of whole saliva flow rates and mucin concentrations in healthy caucasian young and aged adults. J Dent Res, 1992, 71:1275-1278.
13 Edgar WM. Saliva: its secretion, compsition and functions. Br Dent J, 1992, 172: 305-312.
14 Mackinnon LT, Jenkins DG. Decreased salivary immunoglobins after intense interval exercise before and after training. Med Sci Sports Exerc, 1993, 25: 678-683.
, 百拇医药
15 Fox RI, Robinson C, Curd J, et al. First international symposium on Sjogren's syndrome: suggested criteria for classification. Scand J Rheumatol Suppl, 1986,61: 28-30.
16 Persson RE, Izutsu KT, Treulove EL, et al. Difference in salivary flow rates in elderly subjects using xerostomatic medications. Oral Surg Oral Med Oral Pathol, 1991, 72: 42-46.
17 王松灵, 朱宣智, 吉野教夫,等. 正常人口腔颌面组织放射生物学研究概况. 中华口腔医学杂志, 1994, 29: 57-59.
, 百拇医药
18 Markitziu A, Zafiropoulos G, Tsalikisl, et al. Gingival health and salivary fuction in head and neck-irradiated patients. A five-year follow-up. Oral Surg Oral Med Oral Pathol, 1992, 73: 427-433.
19 Streckfus CF, Wu AJ, Ship JA, et al. Stimulated parotid salivary flow rates in normotensive, hypertensive and hydrochlorothiazide-medicated. J Oral Pathol Med, 1994, 23: 280-283.
20 Streckfus CF, Marcus S, Welsh S, et al. Parotid function and composition of parotid saliva among elderly edentulous African-American diabetics. J Oral Pathol Med, 1994, 23: 277-279., 百拇医药
单位：100050 北京口腔医院放射科；赵竹陶 王松灵(现在北京解放军总医院口腔科)，颌面外科(朱宣智)
关键词：
中华口腔医学杂志/980522 唾液分泌的研究是唾液腺功能的基础研究，也是涉及口腔生理、生化、微生物及临床等多学科的基础研究。我们对唾液的收集方法、生理状态及病理状态下唾液的分泌情况进行了综述。
一、唾液的收集方法
唾液收集分全唾液收集和单个腺体的唾液收集。收集应在早晨、空腹、安静房间里进行，采用坐位。不同日期对同一患者的连续收集，应在同一环境、同一时间内进行，以避免环境及昼夜生理节律的影响[1，2]。
(一)常用收集方法
, http://www.100md.com
1. 静态唾液总流率的测定[3]：①滴取法(draining)：手持带漏斗的试管，使唾液沿下唇逐渐滴入试管，结束时受试者将口内剩余唾液全部吐入试管。②吐取法(spitting)：使唾液在口底聚集，受试者每隔60 s将其吐入试管，一般收集10 min。③吸引法(suction)：用真空吸引器将唾液自口底持续吸入试管，吸引头置于舌下，结束时用吸引头环绕口腔前庭及口底一周，吸取剩余唾液。④棉棒法(swab)：将大小约0.2 cm×0.6 cm的棉棒预先称重，置于口内各大涎腺开口处，收集结束后重新称重。
2.动态唾液总流率的测定：①酸刺激法: 将0.1 mol/L的枸椽酸滴于舌背前部或直径约2.0 cm的滤纸上，置于舌背前1/3，隔1 min更换1次[3]。②咀嚼刺激法：将1 g胶姆以20次/min的频率咀嚼10 min[3]或温水泡软5 g医用白蜡，咀嚼6 min[4]。③方糖法(fabertest): 取1.5 cm×1.5 cm的方糖放于舌背，在正常分泌情况下，15～30 min后方糖全部溶解，否则为分泌功能低下[5]。
, 百拇医药
附表 健康人唾液流率测定方法及参考值 测定项目
测定方法
测定值
例数
滴取法
0.47±0.06g/min
17
静态唾液
吐取法
0.46±0.05g/min
17
总流率
, 百拇医药
吸引法
0.54±0.12g/min
17
(Navazesh[3])
棉棒法
0.52±0.08g/min
17
酸刺激(Navazesh[3])
2.64±0.22g/min
17
动态唾液
, 百拇医药
咀嚼胶姆(Navazesh[3])
2.38±0.52g/min
17
总流率
咀嚼白蜡(王松灵[10])
4.12±2.24ml/6min(3～5岁)
30
6.84±2.76ml/6min(6～10岁)
30
咀嚼白蜡(邹兆菊[4])
, 百拇医药 9.90±4.49ml/6min(11～15岁)
30
>6ml/6min(成人)
-
腮腺流率
静态
0.01～0.07ml/min
-
(Edgar[13])
酸刺激
0.7～2.3ml/min
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, 百拇医药
颌下腺流率
静态
0.02～0.20ml/min
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(Edgar[13])
酸刺激
0.4～1.3ml/min
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3.单独腺体的唾液收集：①腮腺：用Lash ley cup或modified Carson-Critteden device收集。为一带有内腔和外腔的塑料或金属杯，内腔通过塑料管道输送唾液至收集器，外腔连接负压吸引装置，使用时将杯子放在导管口上[1]。②颌下腺与舌下腺：常通过Wharton's导管共同开口于口腔，所以通常将其分泌物收集在一起。插管法：将一支一端渐细的聚乙烯管插入导管口收集[1]；或隔离法：用棉卷将双侧腮腺导管口挡住，将Wharton's导管口隔离，使其分泌物集中于口底，用微吸量管以轻吸法收集[6]。
, 百拇医药
4. 小涎腺分泌物的收集：利用色层分析纸收集。将待测区粘膜擦干，将色层分析纸条(6 mm×16 mm)贴于粘膜上，2 min后用湿度仪测其含水率[7]。
(二)常用测定方法的正常参考值
19世纪末,随着“口干”概念的提出,以测定唾液流率评价涎腺功能的研究逐渐展开, 至1967年开始将其标准化。Bertam(1967)认为静态唾液流率(unstimulated whole, UW)在0.2～0.9 ml/ 15min时为涎腺功能低下。Christensen(1986)发现健康成人(18～35岁)中20%的人UW低于0.2 ml/min，Navazesh等[8](1992)基于Christensen的研究，提出UW等于0.12 ml/min为正常最低值。UW的正常界限值变动范围较大。例如酸刺激腮腺流率(acid stimulate parotid, ASP)，Mason(1967)提出正常最低限为0.50毫升/ 分*腮腺，但Daniels(1984)发现即使以ASP 0.40毫升/分*腮腺为正常最低界值也不能全部查出经活检证实的功能低下者。Navaxesh(1992)以ASP低于0.30毫升/分钟*腮腺作判定标准，效果亦不佳[8]。
, 百拇医药
小涎腺分泌量不到唾液总量的10%[2]，唇、颊、腭腺的流率各不相同，但左右对称，颊腺流率最高。小涎腺分泌量不随酸刺激而上升，且有时下降。无论静态或动态测定，小涎腺流率都不随唾液总流率的波动而变化[7]。总之，小涎腺倾向于保持一恒定分泌量，以保护口腔软硬组织。一些研究者的唾液流率测定方法及正常参考值详见附表。
(三)常用测定方法的比较及其意义
在静态唾液总流率的测定方法中，吐取法和滴取法较常用，吸引法和棉棒法会产生一定程度的刺激，现已不提倡[1]。一般认为，静止唾液流率反映涎腺基础状况下的分泌情况。在动态唾液总流率的测定中，酸刺激法会影响某些分析结果，咀嚼白蜡法不影响成分分析，但难以保持恒定的咀嚼力[1]。一般认为，动态唾液流率反映了涎腺的贮备功能。单独腺体的唾液收集方法复杂，不能反映所有涎腺的总的分泌状况，评价整个涎腺功能时也有局限性，但测定唾液成分时因其污染少而被采用。
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二、涎腺在生理状况下的分泌
1.唾液流率与生理节律：正常人每日分泌600 ～700 ml唾液，大部分人一天内静止唾液流率的峰值大约在下午5时，夜间流率最小。唾液分泌量也随季节变化而不同，冬季分泌量达高峰[1,2]。
2.唾液流率与年龄、性别：随着儿童的生长发育，其静态唾液流率[9]、动态唾液流率[10]均有增长趋势，提示涎腺分泌功能随发育而逐渐提高。成人静态唾液流率随年龄增长呈下降趋势[11]，但动态唾液流率不随年龄增长而下降，甚至有时上升[12]。女性无论静态或动态，平均流率均低于男性[11]。
3.唾液流率与生理刺激：①咀嚼运动刺激：咀嚼无味团块可刺激位于咀嚼肌、颞下颌关节、牙周韧带和粘膜上的受体，进而刺激涎核，增加副交感神经的分泌[13]。②味觉刺激：最有效者为酸刺激，余者依次为甜、咸和苦[13]。③嗅觉刺激：嗅觉可使颌下腺分泌增多，但与腮腺分泌无关。
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4.唾液流率与其他因素：①机体水合作用：体液丢失8%可导致唾液分泌中止[13]。②体位：立、坐、卧位的唾液流率依次减低[1]。③光线和清醒状态：在黑暗中或在睡眠期间唾液流率明显下降[13]。④运动和精神压力：剧烈的运动或精神压力均可导致唾液流率下降，这可能是下丘脑中枢对涎核的抑制作用[14]。
三、涎腺在病理状态下的分泌
1.舍格伦综合征(Sjogren syndrome, SS)：涎腺分泌功能低下是SS的临床特征，其主要原因可能是由于淋巴细胞浸润,并伴有腺泡细胞变性萎缩和导管破坏。 Fox等[15]将静止唾液总流率低于1.5 ml/15 min作为判断唾液分泌减低，诊断SS的标准之一。王松灵[10]在SS诊断标准中，以上午空腹咀嚼医用白蜡5g、6min，低于6 ml/6min为异常减低。
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2.药物引起的口干： 有些药物可以减少唾液分泌，例如抗胆碱能药阿托品、抗精神病药苯妥英钠、利尿剂、抗组织胺剂及某些抗高血压药等[13]。由于药物在机体内代谢的变化及药物间相互作用的复杂性，药物影响涎腺分泌功能的准确机制尚不能肯定。目前认为可能的途径有：①模拟自主神经作用。②直接作用于唾液的细胞合成阶段。③改变体液、电解质平衡或破坏腺体、影响腺管或导管再吸收功能，从而间接影响唾液分泌[16]。
3.放疗后口干：腮腺(浆液性腺体)对射线最敏感，其次是颌下腺，舌下腺敏感性最小[17]。放疗后，唾液总流率显著下降，但过一段时间可以有所恢复，恢复程度与接受放疗的剂量及区域有关[18]。
4.高血压：未经药物治疗的高血压患者，其腮腺刺激流率与正常人无异；而用药后患者腮腺刺激流率下降，这可能与降压药的作用有关[19]。
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5.糖尿病：多数研究表明，糖尿病若能得到较好控制，例如注射胰岛素，口服降糖药或控制饮食，患者涎腺功能则无明显减弱[20]。
参考文献
1 Navazesh M. Methods for collecting saliva. Ann N Y Acad Sci, 1993, 694: 72-77.
2 Screeby LM. Recogonition and treatment of salivary induced conditions. Int Dent J, 1989, 39:197-204.
3 Navazesh M, Christensen CM. A comparition of whole mouth resting and stimulated salivary measurement procedures. J Dent Res, 1982, 61: 1158-1162.
, http://www.100md.com
4 Wang SL, Zou ZJ, Yu SF, et al. Recurrent swelling of parotid gland and sjogern syndrome. Int J Oral Maxillofacial Surg , 1993, 22: 362-365.
5 张锡泽，邱尉六，主编. 口腔颌面外科学. 北京: 人民卫生出版社，1982.43.
6 Fox PC, Van Der Ven PF, Sonies BC, et al . Xerostomia: evaluation of a symptom with increasing significance. J Am Dent Associ, 1985, 10:519-525.
7 Shern RJ, Fox PC, Cain JL, et al. A method for measuring the flow of saliva from the minor salivary glands. J Dent Res, 1990, 69: 1146-1149.
, 百拇医药
8 Navazesh M, Christensen C, Brightman V. Clinical criteria for the diagonosis of salivary gland hypofunction. J Dent Res, 1992, 71: 1363-1369.
9 Watannbe S, Dawes C. Salivary flow rates and salivary film thickness in five-year-old children. J Dent Res, 1990, 69: 1150-1153.
10 王松灵, 邹兆菊, 龙珠. 正常儿童唾液总量和唾液免疫球蛋白. 中华口腔医学杂志, 1990, 25:288-290.
11 Percival RS, Challacombe SJ, Marsh PD. Flow rates of resting whole and stimulated parotid saliva in relation to age and gender. J Dent Res, 1994, 73:1416-1420.
, 百拇医药
12 Navazesh M, Mulligan RA, Kipnis V. Comparition of whole saliva flow rates and mucin concentrations in healthy caucasian young and aged adults. J Dent Res, 1992, 71:1275-1278.
13 Edgar WM. Saliva: its secretion, compsition and functions. Br Dent J, 1992, 172: 305-312.
14 Mackinnon LT, Jenkins DG. Decreased salivary immunoglobins after intense interval exercise before and after training. Med Sci Sports Exerc, 1993, 25: 678-683.
, 百拇医药
15 Fox RI, Robinson C, Curd J, et al. First international symposium on Sjogren's syndrome: suggested criteria for classification. Scand J Rheumatol Suppl, 1986,61: 28-30.
16 Persson RE, Izutsu KT, Treulove EL, et al. Difference in salivary flow rates in elderly subjects using xerostomatic medications. Oral Surg Oral Med Oral Pathol, 1991, 72: 42-46.
17 王松灵, 朱宣智, 吉野教夫,等. 正常人口腔颌面组织放射生物学研究概况. 中华口腔医学杂志, 1994, 29: 57-59.
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18 Markitziu A, Zafiropoulos G, Tsalikisl, et al. Gingival health and salivary fuction in head and neck-irradiated patients. A five-year follow-up. Oral Surg Oral Med Oral Pathol, 1992, 73: 427-433.
19 Streckfus CF, Wu AJ, Ship JA, et al. Stimulated parotid salivary flow rates in normotensive, hypertensive and hydrochlorothiazide-medicated. J Oral Pathol Med, 1994, 23: 280-283.
20 Streckfus CF, Marcus S, Welsh S, et al. Parotid function and composition of parotid saliva among elderly edentulous African-American diabetics. J Oral Pathol Med, 1994, 23: 277-279., 百拇医药