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编号:10228949
胃腺癌组织的低密度脂蛋白受体检测分析
http://www.100md.com 《癌症》 2000年第3期
     作者:王培林 孔峰 于文滨 邵风芝 卢雪峰 胡晓燕

    单位:王培林(山东医科大学第二附属医院普外科,山东济南250033);孔峰(山东医科大学生化教研室,山东济南250012);于文滨(山东医科大学第二附属医院普外科,山东济南250033);邵风芝(山东医科大学生化教研室,山东济南250012);卢雪峰(山东医科大学附属医院内科,山东济南250012);胡晓燕(山东医科大学生化教研室,山东济南250012)

    关键词:胃肿瘤;腺癌;受体;LDL.

    癌症000332

    分类号:R735.2;R730.43.文献标识码:D

    文章编号:1000-467(2000)03-0287-02▲

    1978年Goldstein实验室的Ho等人[1]首先报道3例急性细胞性白血病细胞表面高密度脂蛋白受体(LDLR)活性增高,其后相继发现绒癌、子宫内膜癌和胃癌等[2]癌细胞表面的LDLR活性均有不同程度的增高。本文对胃腺癌组织及其周边正常胃组织进行了LDLR水平测定,并探讨了胃腺癌组织LDLR活性与组织分化程度的相关性。
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    1 材料与方法

    1.1 标本收集

    39例经外科切除的胃腺癌组织及周边正常胃组织(距癌组织约3cm),各分为2份,1份送病理科镜检,1份立即放入冰瓶,于液氮中速冻1h后,移至-70℃冰箱保存。

    1.2 方法

    1.2.1 匀浆制备:取冰冻组织,分别用5mlpH7.4Tris-HCl缓冲液洗涤3次,再用滤纸吸去其表面水分,剪碎后称取组织200~300mg,加2ml缓冲液用玻璃匀浆器在冰浴下制成匀浆。

    1.2.2 蛋白质定量:采用Lowery法,以牛血清蛋白(BSA)作为标准,分析匀浆中蛋白质的浓度。

    1.2.3 125I-LDL制备:收集若干正常人血清,混合后用密度梯度离心法[3]分离纯化LDL(d:1.019~1.063g/ml),用Iodogen法[4]碘标LDL,125I-LDL比活度为25×107~35×107cpm/mg蛋白。
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    1.2.4 LDLR分析:采用Vitols法[5],稍加改良。进行7种浓度的饱和分析和Scatchard作图,确定饱和浓度后,应用饱和浓度点的放射性配体的终浓度进行单点测定,反应总体积为300μl,用3个复管取其均值进行统计学处理。

    2 结果

    2.1 胃腺癌组织及其周边正常胃组织LDLR饱和分析与Scatchard作图求得LDLR的解离常数(kd值)分别为3.7×10-9mol/L和2.04×10-9mol/L。LDLR的最大结合容积(Bmax值)分别为2.49×10-3pmol/μg蛋白和0.9×10-4pmol/μg蛋白。从饱和曲线分析所示125I-LDL45μg蛋白基本上达到饱和,故39例标本单点测定时以此浓度进行。

    2.2 单点法测定胃腺癌组织及其周边正常胃组织LDLR水平,可见胃腺癌组织的LDLR明显高于周边胃组织(见表1)。
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    表1 LDLR水平的比较

    组织

    LDLR

    pmol/mg蛋白

    pmol/g组织

    周边胃组织

    0.915±0.126*

    77.26±25.62*

    胃腺癌组织

    1.693±0.350

    92.26±45.09
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    *P<0.001

    3 讨论

    胆固醇是细胞膜的重要组成成分,故癌瘤细胞增殖愈快,需要胆固醇也愈多,胆固醇主要由血浆LDL代谢而来,其次是细胞本身合成。血浆LDL60%~80%是经受体途径代谢,其余20%~40%由非受体途径代谢,因此,增殖快的细胞表面LDLR活性增高。当LDL与其受体结合形成复合物后,经胞吞作用入胞,在溶酶体内降解,释放出胆固醇作为细胞膜的组成成分,也可作为合成胆汁酸、甾体类激素等原料。

    胃腺癌细胞及相应正常组织LDLR的kd值和Bmax值基本一致,表明癌变组织LDLR的亲和性与特异性无明显改变,与吕涛等[6]报道基本相符。癌组织LDL代谢率明显高于周边正常组织主要是细胞表面LDLR数目增加,活性增强所致。

    Gal等[7]认为肿瘤细胞LDL代谢率与细胞分化状态有关,分化程度越高,LDLR数目则越少,分化程度越低则受体数目越多。本研究中6例低分化腺癌LDLR为197.31pmol/g组织,而33例高分化腺癌LDLR为87.20pmol/g组织,1例胃溃疡误诊为胃癌,其LDLR仅为29.93pmol/g组织。
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    LDLR水平增高是胃腺癌组织的共同特点,且其LDLR亲和性与特异性等性质无明显改变,这为LDLR介导的癌瘤靶向治疗提供理论依据[8]

    通讯作者:王培林:Tel:86-531-8966868-85601

    参考文献:

    [1]Ho YK, Smith RG, Brown MS, et al. Low-density lipoprotein(LDL) receptor activity in human acute myeloyenous leukemia cells [J]. Blood, 1978, 52: 1099~ 1114.

    [2]苏琦,罗朝阳,藤华,等.大蒜对NNNG诱发实验性胃癌及其癌前病变过程中血Tch、LDL、HDL的影响[J].中国肿瘤临床,1996,23(2):130~133.
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    [3]Havel RJ, Eder HA, Bragdon JH. The distribution and chemical composition of ultracentrifugally separated lipoprotein human serum [J]. J Clin Invest,1955,34: 1345~ 1353.

    [4]王浩丹,铃木智晴,出村黎子,等.The study on radioiodination of peptide hormones using Iodogen [J]. Journal of Tokyo woman's medical college,1988,58(2): 267~ 271.

    [5]Henriksson P, Eriksson M, Ericsson S, et al. Hypocholesterolaemia and incre ased elimination of low-density lipopro-teins in metastatic cancer of the prostate [J]. Lancet, 1989, 2: 1178~ 1180.
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    [6]吕涛,王明运,徐松德,等.人上皮样胃癌细胞株与人正常上皮细胞LDL受体的分析比较[J].山东医科大学学报,1996,34(1):7~11.

    [7]Gal D, Ohashi M, MacDonald PC, et al. Low-density lipoprotein as a potential vehicle for chemotherapeutic agents and radionucleotides in the management of gynecologic neoplasms [J]. Am J Obstet Gynecol, 1981, 139: 877~ 885.

    [8]隋波,田克立,于雪艳,等.LDLACM复合物对胃癌细胞株(SGC-901,NKM-45)的细胞毒作用[J].山东医科大学学报,1997,35(3):184~187.

    收稿日期:1999-07-29

    修稿日期:1999-10-22, http://www.100md.com