当前位置: 首页 > 期刊 > 《首都医科大学学报》 > 1999年第3期
编号:10266542
原发性帕金森病线粒体酶复合体Ⅰ功能缺陷*
http://www.100md.com 《首都医科大学学报》 1999年第3期
     作者:高枫 陈清棠

    单位:北京医科大学第一医院神经内科,北京 100034

    关键词:

    990324 原发性帕金森病(Parkinson disease,PD)是神经系统变性性疾病,病因不清。10多年前发现1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氢吡啶能通过抑制线粒体呼吸链酶复合体Ⅰ导致PD[1],国外陆续有报道PD患者黑质、血小板、骨骼肌等多种组织存在线粒体酶复合体功能障碍[2~4]。弄清酶复合体缺陷产生的原因,对认识PD病因与发病具有重要意义。线粒体酶复合体的亚基由核DNA和线粒体DNA(mtDNA)共同编码,二者突变均可导致其功能障碍[2~4]。我们用无线粒体DNA的细胞系(ρ0细胞)对患者血小板线粒体功能进行研究,分析我国PD患者线粒体功能缺陷类型及其基因突变基础。
, http://www.100md.com
    1 材料与方法

    20例PD患者来自本院1996年4~12月间神经内科门诊,平均年龄(66±9)岁,男13例,女7例。正常对照20例,为同期门诊正常查体的健康自愿者,男11例,女9例,平均年龄(64±8)岁,与PD患者相比差别无统计学意义。

    分离外周血血小板:取外周血10ml,离心分离血小板,计数后,冻存于液氮中备用。

    ρ0细胞培养与鉴定:参照文献报道将人食管癌细胞系在含EB50μg.L-1培养液中制备出ρ0细胞,用选择性培养液(不含尿嘧啶和丙酮酸钠)进行鉴定[5]

    血小板与ρ0细胞融合:收集106个ρ0细胞,加入0.1ml420g.L-1聚乙二醇,混匀后轻轻加在107血小板沉淀上。1min后加入适量培养液,混匀。3d后将培养液更换为选择性培养液。
, 百拇医药
    融合细胞线粒体功能测定:于细胞融合后40d左右,收集107个细胞,以差速离心法分离线粒体。用极谱法测定融合细胞线粒体功能:分别以苹果酸+谷氨酸、琥珀酸、维生素C+四甲基-对-苯二胺为底物测量氧耗率及抗氰呼吸[5,6]

    2 结果与讨论

    1989年King等[7]构建了ρ0细胞。给予外源线粒体,可以重建ρ0细胞的呼吸链功能,这为研究线粒体功能缺陷的分子遗传机制提供了可能。由于PD患者血小板有特征性酶复合体活性下降,而外周成熟血小板又是天然的仅有mtDNA无核基因的细胞,因此可用来与ρ0细胞融合,融合细胞的mtDNA来自患者血小板,核基因由ρ0细胞提供,因此融合细胞的线粒体功能来源于提供mtDNA的血小板。如果PD患者线粒体生化缺陷是由mtDNA突变所致,那么由于它的mtDNA是患者血小板提供的,因此其线粒体功能仍然是异常的;如果患者线粒体生化缺陷是来自核基因突变,那么由于融合细胞的核基因是相对正常的,其线粒体生化缺陷就会得到纠正。通过本实验就能确定出PD患者线粒体生化缺陷及其产生的遗传背景。我们将血小板与ρ0细胞融合后测定线粒体呼吸氧耗率,发现以苹果酸和谷氨酸为底物时(反映酶复合体Ⅰ、Ⅲ~Ⅴ功能),患者组(1.25±0.08)明显低于正常对照组(1.75±0.08),降低28.6%,差别有统计学意义(P<0.001);以琥珀酸为底物时(反映酶复合体Ⅱ~Ⅴ功能),患者组(3.21±0.08)与正常对照组(3.27±0.07)差别无统计学意义(P>0.05);维生素C和TMPD为底物(反映酶复合体Ⅳ、Ⅴ功能),患者组(4.47±0.09)与对照组(4.54±0.10)差别无统计学意义(P>0.05)。这些结果表明线粒体酶复合体Ⅱ~Ⅴ活性正常,以苹果酸和谷氨酸为底物时的氧耗率的降低来源于酶复合体Ⅰ活性受损。由于融合细胞的核背景一致,其线粒体功能的差别仅受mtDNA影响,因此本实验发现的患者酶复合体Ⅰ缺陷来源于mtDNA的突变。
, http://www.100md.com
    抗氰呼吸是指在线粒体呼吸链中漏出的电子与氧结合所消耗的氧,代表着氧自由基的水平,抗氰呼吸越多,自由基水平越高。本实验发现患者组抗氰呼吸(8.76±0.25)%高于正常对照组(6.20±0.10)%,二者差别有统计学意义(P<0.05)表明患者的自由基增多。线粒体酶复合体Ⅰ抑制可导致自由基增多,可能是本实验PD患者抗氰呼吸增多的原因。

    * 国家自然科学基金(39870725)和高等学校博士学科点专项科研基金资助项目。

    参考文献

    1 Langton JW, Ballard P, Tetrud JW, et al. Chronic Parkinsonism in human due to product of meperidine-analog synthesis. Science, 1983, 219:979-980

, 百拇医药     2 Schapira AHV, Cooper JW, Dexter D, et al. Mitochondrial complex Ⅰ deficiency in Parkinson's disease. J Neurochem, 1989, 54:823-827

    3 Parker WD, Boyson SJ, Parks JK., et al. Abnormalities of the electron transport chain in idiopathic Parkinson's disease. Ann Neurol, 1989, 26:719-723

    4 Shoffner JM, Watts RL, Juncos JL, et al. Mitochondrial oxidative phosphorylation defects in Parkinson's disease. Ann Neurol, 1991, 30:332-339
, 百拇医药
    5 King MP, Attardi G. Isolation of human cell lines lacking mitochondrial DNA. Methods Enzymol, 1996, 264:304-313

    6 King MP, Attardi G. Mitochondrial mediated transformation of human cells. Methods Enzymol, 1996, 264:313-334

    7 King MP, Attardi G. Human cell lines lacking mitochondrial DNA: Repopulation with exogenous mitochondria by complementation. Science, 1989, 246:500-503

    (1999-03-12收稿), http://www.100md.com