大鼠脂肪细胞TSH受体机能研究
作者：林玲 原口和贵 志村浩已 远藤登代志 女屋敏正
单位：林玲：福建医科大学附属第二医院内科 (泉州 362000)；原口和贵 志村浩已 远藤登代志 女屋敏正：日本山梨医科大学第三内科(日本山梨 409-38)
关键词：受体；促甲状腺素；脂肪类；促甲状腺素
中国病理生理杂志991024
摘要 目的：研究TSH及Graves'IgG对大鼠脂肪细胞的作用。方法：获取大鼠游离的脂肪细胞。溶脱TSH受体。采用蛋白A层析柱纯化Graves'患者的IgG。以脂肪细胞内cAMP浓度及释放到孵育液中甘油浓度作为脂肪分解指标，用cAMP及甘油试剂盒测定cAMP浓度及甘油浓度。结果：1 mU/mL的TSH能增加大鼠游离脂肪细胞的cAMP浓度及甘油的释放。腺苷引起cAMP及甘油的TSH剂量依赖曲线向右移。Graves'IgG抑制[125I]-TSH结合于大鼠脂肪细胞膜上TSH受体，并能刺激游离脂肪细胞内cAMP的形成。结论：TSH受体功能性表达于脂肪细胞，其生物学效应是通过活化腺苷环化酶而实现的。
, 百拇医药
Function of thyrotropin receptor of rat fat cells
LIN Ling,Kazutaka HARAGUCH1,Hiroki SHIMURA1,Toyoshi ENDO1,Toshimasa ONAYA1
Department of Internal Medicine,Second Affiliated Hospital,Fujian Medical University,Quanzhou (362000)
1The Third Department of Internal Medicine,Yamanashi Medical University,Tamaho,Yamanashi 409-38,Japan
, 百拇医药
Abstract AIM: The functional expression of thyrotropin (TSH) receptor (TSHR) in nonthyroid tissues is contraversial.In order to clarify the issue,effects of TSH and Graves' IgG on rat fat cells were investigated.METHODS：Isolated fat cells were prepared by the method of Rodbell.cAMP and glycerol were measured using commercial kits.Solubilization of TSHR was carried out as described by Smith et al.TBII assay was carried out by a commercial kit.RESULTS：One mU/mL of TSH increased cAMP formation and glycerol release by isolated rat fat cells.The addition of adenosine caused TSH dose- response curves of both cAMP formation and glycerol release shift to the right.Graves' IgG inhibited [125 I]-TSH binding to TSHR in rat fat membrane and also stimulated cAMP formation in isolated fat cells.CONCLUSION：TSHR is functionally expressed in rat fat cells and its biological effects are exerted by activation of adenylate cyclase.
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MeSH Receptors,thyrotropin; Fats; Thyrotropin
促甲状腺激素(thyrotropin， TSH)受体在决定甲状腺功能中起关键作用，是一种甲状腺特异性蛋白质。但是最近研究发现TSH受体mRNA表达于数种甲状腺外组织，如淋巴细胞、球后组织的成纤维细胞[1～4]。我们先前应用Western印迹法证实球后组织的脂肪细胞存在TSH受体[3]；后来又报告从大鼠脂肪细胞克隆了全长的TSH受体cDNA，且脂肪细胞TSH受体mRNA水平及受体数目与甲状腺细胞的TSH受体mRNA水平及受体数目相仿[4]。为了阐明脂肪细胞TSH受体的功能，本文探讨TSH及Graves'IgG对脂肪细胞的作用。
材料和方法
一、细胞准备：
取6周龄的Sprag-Dawley大鼠的附睾脂肪垫15 g。根据Rodbell方法[5]分离脂肪细胞。将脂肪组织剁成细块悬浮于含10 mmol/L Hepes pH7.4及 1%牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)片段V的Krebs-Ringer重碳酸盐(Krebs-Ringer bicarbonate,KRB)缓冲液中。在一些实验中添加2 U/mL的腺苷脱氨酶(adenosine deaminase,ADA)。加入1 mg/mL的胶原酶I于37℃孵育45 min完成水解。用2.5 mm的尼龙网过滤脂肪细胞。经600×g离心10 s共3次后，上浮脂肪细胞用于实验。
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二、cAMP含量及甘油浓度测定：
将脂肪细胞在含有牛TSH、纯化的Graves'IgG和4%BSA的KRBH缓冲液(pH7.4)中 37℃孵育30 min。Graves'IgG用免疫纯IgG纯化试剂盒(PIERCE,Rockford,IL.USA)进行纯化。反应培养基中含4%(V/V)脂肪细胞混悬液。加入0.5 mmol/L EDTA(pH7.4)终止孵育并立即煮沸细胞[6]。cAMP含量用试剂盒(Yamasa,Shoyu CO.Japan.)测定。
含4%(V/V)大鼠脂肪细胞的甘油分析缓冲液(Dulbecco's改良Eagles培养基DMEM)0.3 mL，37 ℃孵育30 min。该培养基含10 mmol/L Hepes(pH7.4)、1%BSA及1 mmol/L异丁基甲黄嘌呤(isobutyl methyl xanthine,IBMX)，不含酚及丙酮酸盐。孵育后，立即收集培养基，65℃加热10 min。应用甘油分析试剂盒“Glycerol-F”(Boehringer Mannheim,Mannheim,FDR)测定释放到培养基中的甘油浓度。
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三、TSH受体溶脱及TSH结合抑制免疫球蛋白(TBII)分析：
TSH受体溶脱按Smith等的方法进行[7]。简言之，新鲜获得的脂肪组织在4℃ 10 mmol/L(pH7.5)Tris-HCl缓冲液中制成匀浆，Tris-HCl缓冲液中含有1 mmol/L苯甲基硫酰氟化物(phenylmethyl-sulfonylfloride,PMSF)，1 μg/mL抗生素leupeptin及3 mmol/L EDTA。10 000×g离心20 min后，沉淀物再混悬，用上述缓冲液洗3遍。粗制的脂肪细胞膜片段用含有0.5%(V/V)Triton X-100(10 mmol/L pH7.5)的Tris-HCl缓冲液及50 mmol/L NaCl混悬。混悬液在4℃中孵育30 min后10 000×g离心60 min。所得上清液含已溶脱TSH受体。TSH结合抑制免疫球蛋白(TSH binding inhibitor immunoglobulin,TBII)分析用试剂盒测试(Diagnostics CO.,Tokyo)。
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结果
一、TSH对大鼠脂肪细胞cAMP形成及甘油释放的作用：
如图1所示：在ADA存在时，1 mU/mL的TSH刺激cAMP形成(A)及甘油释放(B)(分别为基础值的152%及183%)；不存在ADA时，cAMP形成及甘油释放的剂量-反应曲线向右移，需要更高浓度的TSH刺激。表明TSH对大鼠脂肪细胞有脂肪分解效应，同时也提示：内源性腺苷是脂肪细胞对TSH反应低下的部分原因。
Fig 1 Effect of TSH on cAMP formation and glycerol release in isolated rat fat cells.Data are presented as the average value of triplicate samples
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图1 TSH对游离脂肪细胞cAMP形成及甘油释放的作用
二、Graves'IgG对于[125 I]-TSH结合已溶脱大鼠脂肪细胞膜的作用：
比较Graves'IgG对[125I]-TSH与已溶脱大鼠脂肪细胞膜及已溶脱猪甲状腺细胞膜结合的抑制作用。如图2所示：多数Graves'IgG(5/6)特异性抑制[125I]-TSH与大鼠脂肪细胞膜的结合，尽管抑制作用不像对猪甲状腺细胞膜的结合抑制那么强。平均TBII活性在脂肪细胞为14.0%，而在甲状腺细胞为45.7%。6例Graves'病患者(patient 1～6.P1～P6)血清在上述两种不同细胞中呈现的TBII活性强度顺序大致相似：在大鼠脂肪细胞中由强到弱的顺序为P4→P1→P3→P2→P6→P5，类似于猪甲状腺细胞中的抑制活性(P4→P1→P3→P6→P2→P5)。本实验结果证实已溶脱大鼠脂肪细胞膜本身具有TBII的结合特性。
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Fig 2 Effects of Graves' IgGs(patients 1～6,P1～P6) on [125I]-TSH binding to solubilized rat fat and porcine thyroid cell membranes
The inhibitory activity of TBII was calculated as follows: TBII(%)＝[1-(radioactivity of sample-radioactivity of nonspecific binding/radioactivity of negative control-radioactivity of nonspecific binding)]×100
Normal IgG(N) was prepared from the pooled sera of 5 normal subjects
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图2 Graves'IgG对于125I-TSH结合已溶脱大鼠脂肪细胞膜及猪甲状腺细胞膜的作用
三、甲状腺刺激性抗体对大鼠脂肪细胞的作用：
应用大鼠脂肪细胞研究7例Graves'病患者及5名正常人的甲状腺刺激性抗体(TSAb)的活性。比较了大鼠脂肪细胞及转染了人TSHR的中国仓鼠卵巢(Chinese hamster ovary,CHO)细胞对TSAb的反应性。如图3所示：在hTSHR-CHO细胞中具有高度TSAb活性的4例Graves' IgG(2 274±1 360)%在大鼠脂肪细胞中也显示了TSAb活性(223%到4 843%；平均(1 489±1 120)%；3例低滴定度(257±13)%的Graves' IgG在大鼠脂肪细胞中不显示TSAb活性。这些结果提示：高滴定度TSAb对大鼠脂肪细胞呈现有意义的刺激作用。
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Fig 3 Effects of thyroid-stimulating antibody on rat epididymal fat cells and hTSHR-transfected CHO cells.Thyroid-stimulating antibody activity was calculated as follows:TSAb(%)＝(cAMP increase in the presencc of test IgG/cAMP increase in the presence of normal control IgG)×100.Normal IgG was prepared from the pooled sera of 5 normal subjects
图3 甲状腺刺激性抗体对大鼠附睾脂肪细胞及转染人TSH受体的中国仓鼠卵巢细胞的作用
讨论
近有文献报道甲状腺外多种组织存在TSHR mRNA，然而对此尚存争议[2，4，8]，有必要进一步探讨甲状腺外某一特定部位中的TSHR基因表达产物的功能与表达是否相关。值得提及的是，我们先前的研究发现：培养的前脂肪细胞[9]及3T3-LI细胞(第一 株表达TSH受体，且其表达可诱导的非甲状腺细胞株)分化与TSH受体mRNA表达有明显相关性[10]。本研究证实：游离的大鼠脂肪细胞具有对TSH及TSAb的反应性；大鼠脂肪细胞膜存在对TSH特异性的结合。因此，可认为脂肪细胞TSHR与TSH结合与表达具有相关性。内源性腺苷的存在可部分解释低TSH敏感性：它可能通过释放抑制性信号到腺苷环化酶催化单位(经作用于抑制性鸟苷酸结合蛋白Gi)从而抑制cAMP形成并减少脂肪分解作用。
, 百拇医药
本文结果还表明：虽然应用大鼠脂肪细胞所测得的TSAb活性及TBII活性低于应用hTSHR-CHO细胞及猪甲状腺细胞膜所分别测得的活性，Graves'IgG可模拟TSH的作用而TBII阻抑TSH结合。有学者设想：Graves'IgG与TSH占有相同的结合表位，故我们推测两者可能存在一个共同的机制阻止TSH及Graves'IgG结合到脂肪细胞。
*日本 川医学奖学金资助
参考文献
1 Shimura H,Ikuyama S,Shimura Y,et al.The cAMP response element in the rat thyrotropin receptor promoter.J Biol Chem,1993,268:24125.
2 Heufelder AE,Dutton CM,Sarkar G,et al.Detection of TSH receptor RNA in cultured fibroblasts from patients with Graves' ophthalmopathy and pretibial dermopathy.Thyroid,1993,3:297.
, 百拇医药
3 Endo T,Ohno M,Kotani S,et al.Thyrotropin receptor in non-thyroid tissues.Biochem Biophys Res Common,1993,774.
4 Endo T,Ohta K,Haraguchi K,et al.Cloning and functional expression of a thyroid receptor cDNA from rat fat cells.J Biol Chem,1995,270(18):10833.
5 Rodbell M.Metabolism of isolated fat cells.J Biol Chem,1964,239:375.
6 Haraguchi K,Saito T,Kaneshige M,et al.Desensitization and internalization of a thyrotropin receptor lacking the cytoplasmic carboxy-termainal region.J Mol Endocrinol,1994,13:283.
, 百拇医药
7 Smith BR,Hall R.Binding of thyroid stimulator to thyroid membranes.FEBS Lett,1974,42:301.
8 Paschke R,Metcalfe A,Alcalde L,et al.Presence of nonfunctional thyrotropin receptor variant transcripts in retroocular and other tissues.J Clin Endocrinol Metab,1994,79(5):1234.
9 Haraguchi K,Shimura H,Lin L,et al.Differentiation of rat preadipocytes is accompanied by expression of thyrotropin receptor.Endocrinology,1996,137:3200.
10 Haraguchi K,Shimura H,Lin L,et al.Functional expression of thyrotropin receptor in differentiated 3T3-L1 cells: A possible model cell line of extrathyroidal expression of thyrotropin receptor.Biochem Biophys Res Common,1996,223(1):193.
(1998年12月4日收稿，1999年7月14日修回), http://www.100md.com
单位：林玲：福建医科大学附属第二医院内科 (泉州 362000)；原口和贵 志村浩已 远藤登代志 女屋敏正：日本山梨医科大学第三内科(日本山梨 409-38)
关键词：受体；促甲状腺素；脂肪类；促甲状腺素
中国病理生理杂志991024
摘要 目的：研究TSH及Graves'IgG对大鼠脂肪细胞的作用。方法：获取大鼠游离的脂肪细胞。溶脱TSH受体。采用蛋白A层析柱纯化Graves'患者的IgG。以脂肪细胞内cAMP浓度及释放到孵育液中甘油浓度作为脂肪分解指标，用cAMP及甘油试剂盒测定cAMP浓度及甘油浓度。结果：1 mU/mL的TSH能增加大鼠游离脂肪细胞的cAMP浓度及甘油的释放。腺苷引起cAMP及甘油的TSH剂量依赖曲线向右移。Graves'IgG抑制[125I]-TSH结合于大鼠脂肪细胞膜上TSH受体，并能刺激游离脂肪细胞内cAMP的形成。结论：TSH受体功能性表达于脂肪细胞，其生物学效应是通过活化腺苷环化酶而实现的。
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Function of thyrotropin receptor of rat fat cells
LIN Ling,Kazutaka HARAGUCH1,Hiroki SHIMURA1,Toyoshi ENDO1,Toshimasa ONAYA1
Department of Internal Medicine,Second Affiliated Hospital,Fujian Medical University,Quanzhou (362000)
1The Third Department of Internal Medicine,Yamanashi Medical University,Tamaho,Yamanashi 409-38,Japan
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Abstract AIM: The functional expression of thyrotropin (TSH) receptor (TSHR) in nonthyroid tissues is contraversial.In order to clarify the issue,effects of TSH and Graves' IgG on rat fat cells were investigated.METHODS：Isolated fat cells were prepared by the method of Rodbell.cAMP and glycerol were measured using commercial kits.Solubilization of TSHR was carried out as described by Smith et al.TBII assay was carried out by a commercial kit.RESULTS：One mU/mL of TSH increased cAMP formation and glycerol release by isolated rat fat cells.The addition of adenosine caused TSH dose- response curves of both cAMP formation and glycerol release shift to the right.Graves' IgG inhibited [125 I]-TSH binding to TSHR in rat fat membrane and also stimulated cAMP formation in isolated fat cells.CONCLUSION：TSHR is functionally expressed in rat fat cells and its biological effects are exerted by activation of adenylate cyclase.
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MeSH Receptors,thyrotropin; Fats; Thyrotropin
促甲状腺激素(thyrotropin， TSH)受体在决定甲状腺功能中起关键作用，是一种甲状腺特异性蛋白质。但是最近研究发现TSH受体mRNA表达于数种甲状腺外组织，如淋巴细胞、球后组织的成纤维细胞[1～4]。我们先前应用Western印迹法证实球后组织的脂肪细胞存在TSH受体[3]；后来又报告从大鼠脂肪细胞克隆了全长的TSH受体cDNA，且脂肪细胞TSH受体mRNA水平及受体数目与甲状腺细胞的TSH受体mRNA水平及受体数目相仿[4]。为了阐明脂肪细胞TSH受体的功能，本文探讨TSH及Graves'IgG对脂肪细胞的作用。
材料和方法
一、细胞准备：
取6周龄的Sprag-Dawley大鼠的附睾脂肪垫15 g。根据Rodbell方法[5]分离脂肪细胞。将脂肪组织剁成细块悬浮于含10 mmol/L Hepes pH7.4及 1%牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)片段V的Krebs-Ringer重碳酸盐(Krebs-Ringer bicarbonate,KRB)缓冲液中。在一些实验中添加2 U/mL的腺苷脱氨酶(adenosine deaminase,ADA)。加入1 mg/mL的胶原酶I于37℃孵育45 min完成水解。用2.5 mm的尼龙网过滤脂肪细胞。经600×g离心10 s共3次后，上浮脂肪细胞用于实验。
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二、cAMP含量及甘油浓度测定：
将脂肪细胞在含有牛TSH、纯化的Graves'IgG和4%BSA的KRBH缓冲液(pH7.4)中 37℃孵育30 min。Graves'IgG用免疫纯IgG纯化试剂盒(PIERCE,Rockford,IL.USA)进行纯化。反应培养基中含4%(V/V)脂肪细胞混悬液。加入0.5 mmol/L EDTA(pH7.4)终止孵育并立即煮沸细胞[6]。cAMP含量用试剂盒(Yamasa,Shoyu CO.Japan.)测定。
含4%(V/V)大鼠脂肪细胞的甘油分析缓冲液(Dulbecco's改良Eagles培养基DMEM)0.3 mL，37 ℃孵育30 min。该培养基含10 mmol/L Hepes(pH7.4)、1%BSA及1 mmol/L异丁基甲黄嘌呤(isobutyl methyl xanthine,IBMX)，不含酚及丙酮酸盐。孵育后，立即收集培养基，65℃加热10 min。应用甘油分析试剂盒“Glycerol-F”(Boehringer Mannheim,Mannheim,FDR)测定释放到培养基中的甘油浓度。
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三、TSH受体溶脱及TSH结合抑制免疫球蛋白(TBII)分析：
TSH受体溶脱按Smith等的方法进行[7]。简言之，新鲜获得的脂肪组织在4℃ 10 mmol/L(pH7.5)Tris-HCl缓冲液中制成匀浆，Tris-HCl缓冲液中含有1 mmol/L苯甲基硫酰氟化物(phenylmethyl-sulfonylfloride,PMSF)，1 μg/mL抗生素leupeptin及3 mmol/L EDTA。10 000×g离心20 min后，沉淀物再混悬，用上述缓冲液洗3遍。粗制的脂肪细胞膜片段用含有0.5%(V/V)Triton X-100(10 mmol/L pH7.5)的Tris-HCl缓冲液及50 mmol/L NaCl混悬。混悬液在4℃中孵育30 min后10 000×g离心60 min。所得上清液含已溶脱TSH受体。TSH结合抑制免疫球蛋白(TSH binding inhibitor immunoglobulin,TBII)分析用试剂盒测试(Diagnostics CO.,Tokyo)。
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结果
一、TSH对大鼠脂肪细胞cAMP形成及甘油释放的作用：
如图1所示：在ADA存在时，1 mU/mL的TSH刺激cAMP形成(A)及甘油释放(B)(分别为基础值的152%及183%)；不存在ADA时，cAMP形成及甘油释放的剂量-反应曲线向右移，需要更高浓度的TSH刺激。表明TSH对大鼠脂肪细胞有脂肪分解效应，同时也提示：内源性腺苷是脂肪细胞对TSH反应低下的部分原因。
Fig 1 Effect of TSH on cAMP formation and glycerol release in isolated rat fat cells.Data are presented as the average value of triplicate samples
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图1 TSH对游离脂肪细胞cAMP形成及甘油释放的作用
二、Graves'IgG对于[125 I]-TSH结合已溶脱大鼠脂肪细胞膜的作用：
比较Graves'IgG对[125I]-TSH与已溶脱大鼠脂肪细胞膜及已溶脱猪甲状腺细胞膜结合的抑制作用。如图2所示：多数Graves'IgG(5/6)特异性抑制[125I]-TSH与大鼠脂肪细胞膜的结合，尽管抑制作用不像对猪甲状腺细胞膜的结合抑制那么强。平均TBII活性在脂肪细胞为14.0%，而在甲状腺细胞为45.7%。6例Graves'病患者(patient 1～6.P1～P6)血清在上述两种不同细胞中呈现的TBII活性强度顺序大致相似：在大鼠脂肪细胞中由强到弱的顺序为P4→P1→P3→P2→P6→P5，类似于猪甲状腺细胞中的抑制活性(P4→P1→P3→P6→P2→P5)。本实验结果证实已溶脱大鼠脂肪细胞膜本身具有TBII的结合特性。
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Fig 2 Effects of Graves' IgGs(patients 1～6,P1～P6) on [125I]-TSH binding to solubilized rat fat and porcine thyroid cell membranes
The inhibitory activity of TBII was calculated as follows: TBII(%)＝[1-(radioactivity of sample-radioactivity of nonspecific binding/radioactivity of negative control-radioactivity of nonspecific binding)]×100
Normal IgG(N) was prepared from the pooled sera of 5 normal subjects
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图2 Graves'IgG对于125I-TSH结合已溶脱大鼠脂肪细胞膜及猪甲状腺细胞膜的作用
三、甲状腺刺激性抗体对大鼠脂肪细胞的作用：
应用大鼠脂肪细胞研究7例Graves'病患者及5名正常人的甲状腺刺激性抗体(TSAb)的活性。比较了大鼠脂肪细胞及转染了人TSHR的中国仓鼠卵巢(Chinese hamster ovary,CHO)细胞对TSAb的反应性。如图3所示：在hTSHR-CHO细胞中具有高度TSAb活性的4例Graves' IgG(2 274±1 360)%在大鼠脂肪细胞中也显示了TSAb活性(223%到4 843%；平均(1 489±1 120)%；3例低滴定度(257±13)%的Graves' IgG在大鼠脂肪细胞中不显示TSAb活性。这些结果提示：高滴定度TSAb对大鼠脂肪细胞呈现有意义的刺激作用。
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Fig 3 Effects of thyroid-stimulating antibody on rat epididymal fat cells and hTSHR-transfected CHO cells.Thyroid-stimulating antibody activity was calculated as follows:TSAb(%)＝(cAMP increase in the presencc of test IgG/cAMP increase in the presence of normal control IgG)×100.Normal IgG was prepared from the pooled sera of 5 normal subjects
图3 甲状腺刺激性抗体对大鼠附睾脂肪细胞及转染人TSH受体的中国仓鼠卵巢细胞的作用
讨论
近有文献报道甲状腺外多种组织存在TSHR mRNA，然而对此尚存争议[2，4，8]，有必要进一步探讨甲状腺外某一特定部位中的TSHR基因表达产物的功能与表达是否相关。值得提及的是，我们先前的研究发现：培养的前脂肪细胞[9]及3T3-LI细胞(第一 株表达TSH受体，且其表达可诱导的非甲状腺细胞株)分化与TSH受体mRNA表达有明显相关性[10]。本研究证实：游离的大鼠脂肪细胞具有对TSH及TSAb的反应性；大鼠脂肪细胞膜存在对TSH特异性的结合。因此，可认为脂肪细胞TSHR与TSH结合与表达具有相关性。内源性腺苷的存在可部分解释低TSH敏感性：它可能通过释放抑制性信号到腺苷环化酶催化单位(经作用于抑制性鸟苷酸结合蛋白Gi)从而抑制cAMP形成并减少脂肪分解作用。
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本文结果还表明：虽然应用大鼠脂肪细胞所测得的TSAb活性及TBII活性低于应用hTSHR-CHO细胞及猪甲状腺细胞膜所分别测得的活性，Graves'IgG可模拟TSH的作用而TBII阻抑TSH结合。有学者设想：Graves'IgG与TSH占有相同的结合表位，故我们推测两者可能存在一个共同的机制阻止TSH及Graves'IgG结合到脂肪细胞。
*日本 川医学奖学金资助
参考文献
1 Shimura H,Ikuyama S,Shimura Y,et al.The cAMP response element in the rat thyrotropin receptor promoter.J Biol Chem,1993,268:24125.
2 Heufelder AE,Dutton CM,Sarkar G,et al.Detection of TSH receptor RNA in cultured fibroblasts from patients with Graves' ophthalmopathy and pretibial dermopathy.Thyroid,1993,3:297.
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3 Endo T,Ohno M,Kotani S,et al.Thyrotropin receptor in non-thyroid tissues.Biochem Biophys Res Common,1993,774.
4 Endo T,Ohta K,Haraguchi K,et al.Cloning and functional expression of a thyroid receptor cDNA from rat fat cells.J Biol Chem,1995,270(18):10833.
5 Rodbell M.Metabolism of isolated fat cells.J Biol Chem,1964,239:375.
6 Haraguchi K,Saito T,Kaneshige M,et al.Desensitization and internalization of a thyrotropin receptor lacking the cytoplasmic carboxy-termainal region.J Mol Endocrinol,1994,13:283.
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7 Smith BR,Hall R.Binding of thyroid stimulator to thyroid membranes.FEBS Lett,1974,42:301.
8 Paschke R,Metcalfe A,Alcalde L,et al.Presence of nonfunctional thyrotropin receptor variant transcripts in retroocular and other tissues.J Clin Endocrinol Metab,1994,79(5):1234.
9 Haraguchi K,Shimura H,Lin L,et al.Differentiation of rat preadipocytes is accompanied by expression of thyrotropin receptor.Endocrinology,1996,137:3200.
10 Haraguchi K,Shimura H,Lin L,et al.Functional expression of thyrotropin receptor in differentiated 3T3-L1 cells: A possible model cell line of extrathyroidal expression of thyrotropin receptor.Biochem Biophys Res Common,1996,223(1):193.
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