微波、高压、真空负压和电炉四种加热法在抗原修复中的比较
作者:赵玉宁 范智勇
单位:赵玉宁 范智勇(解放军第三医院病理科,陕西宝鸡721004)
关键词:
细胞与分子免疫学杂志990129
常规免疫组织化学染色难以使癌基因、抑癌基因及其产物显示满意的效果。应用高温对组织抗原进行修复,可有效地暴露抗原决定簇而增强免疫组织化学染色的结果〔1〕。据此,我们应用了4种不同的加热法,对胶质瘤组织抗原的修复进行了对比研究。
1 材料和方法
1.1 材料 为我科收集的外科检查确诊为胶质瘤的标本,共80例,均经10%福尔马林液固定,石蜡包埋。每例做连续4μm切片20张,附贴于涂有多聚-L-赖氨酸的玻片上,置60℃烤箱内烘烤
, 百拇医药
4h。P16,Rb,EGFR,CyclinD1及S-P试剂盆,均为美国Maxim Biotech公司产品;多聚-L-赖氨酸购自福州迈新生物技术公司。
1.2 方法 ①高压锅直接煮沸法:切片脱蜡至水→蒸馏水洗(2×1min/次)→置柠檬酸缓冲液(pH6.0)中,电炉加热至喷气并持续2min→自来水冲压力锅使之冷却至室温后,取出切片→蒸馏水洗(2×1min/次)→PBS液(pH7.2)洗(2×3min/次)→S-P染色。②微波辐射法:切片脱蜡至水→3%H2O2甲醇处理10min→蒸馏水洗(3×2min/次)→置0.01mol/L柠檬酸缓冲液(pH6.0)中,于92℃~95℃下微波辐射10min→冷却至室温后,取出切片→PBS(pH7.2)洗(3×2min/次)→S-P染色。③真空负压干燥箱加热法:切片脱蜡至水→置0.3%H2O2甲醇中,真空负压处理5min〔2〕→自来水洗(1min)→置0.01mol/L柠檬酸缓冲液(pH6.0)中,放入95℃真空恒温干燥箱中,真空负压处理10min→PBS(pH7.2)洗(3×1min/次)→真空负压染色〔3〕。④电炉加热法:切片脱蜡至水→蒸馏水洗(2×1min/次),→3%H2O2甲醇室温度处理1min→自来水洗(1min),蒸馏水洗(2×1min/次)→置0.01mol/L柠檬酸缓冲液(pH6.0)中电炉加热,反复持续10min,离开电源,冷却至室温→PBS(pH7.2)洗(3×2min/次)→SP染色。
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1.3 对照设置 阳性对照片购自迈新公司,以PBS液置换一抗作为阴性对照;以未经抗原修复的切片进行S-P染色作为阳性对照。
1.4 统计学处理 采用x2检验
2 结果
P16阳性颗粒主要位于胞浆中(图1A);Rb和CyclinD1阳性颗粒主要位于胞核和胞浆(图1Ba和Bb);EGFR阳性颗粒主要位于胞膜(图1C)。本试验将染色结果按阳性细胞的范围分为:“-”阳性细胞数<10%;“+”阳性细胞数占10%~25%;“++”阳性细胞数占25%~50%;“+++”阳性细胞数>50%。具体染色结果见表1。
, 百拇医药
图1 胶质瘤的免疫组化染色结果(×400)
A:胶质瘤Ⅱ级P16染色呈阳性;Ba:胶质瘤Ⅱ级Rb染色呈阳性;
Bb:胶质瘤Ⅳ级CyclinD1染色呈阳性;C:胶质瘤Ⅱ级EGFR染色呈阳性
表1 4种不同抗原修复法的免疫组化染色(n=80) 抗原修复法
D16
Rb
EGFR
CyclinD1
电-
57
, 百拇医药 46
40
56
炉+
19
16
21
16
加++
4
7
16
7
热++
, 百拇医药
0
1
3
1
高-
50
38
26
48
压+
22
25
27
18
, 百拇医药
加++
7
15
20
12
热+++
1*
2*
7*
2*
真-
46
, http://www.100md.com 22
19
38
空+
12
24
24
19
负++
16
27
19
15
压+++
, 百拇医药
6#
7#
18#
8#
微-
45
23
17
36
波+
9
16
, http://www.100md.com 19
11
辐++
17
27
20
19
射+++
9#*
14#*
24#*
14#*
, http://www.100md.com
对-
69
71
61
73
照+
11
7
15
6
组++
0
2
4
, http://www.100md.com
1
+++
0
0
0
0
注:4种方法与对照组比较,P<0.001;*与电炉加热法比较,P<0.05;#与高温加热法比较P<0.01;#*与真空负压法比较,P>0.05
3 讨论
组织标本在用甲醛固定过程中,常因形成醛键、羧甲基,或蛋白与蛋白之间发生交联封闭了抗原决定簇,而使免疫组织化学标记的的敏感性明显降低。有研究表明〔3,4〕,经福尔马林固定后的组织要获得更好的免疫组化染色结果,必须在适当的高温下进行抗原修复。
, 百拇医药
高温组织抗原修复法(AR)是将切片置于柠檬酸缓冲液中,应用各种不同的加热方法使温度达到92℃以上并持续一段时间,以使被封闭的抗原决定簇得以重新暴露和修复,这样抗原、抗体便可更好地结合。本研究中应用了4种不同的加热方法进行AR,并与对照组进行了对比研究。结果显示:4种加热方法中,以真空负压加热法和微波辐射法的染色效果较好;但在操作过程中,各有优点。真空负压法加热的温度均匀恒定,方法简便,不受条件限制,不会使柠檬酸缓冲液沸腾,不易脱片,成功率高,但抽气管易软化。微波辐射法使用方便,但温度不易掌握,缓冲液沸腾可导致脱片,且金属仪器均不能使用。高压加热法的染色效果稍差,电炉直接加热法的染色效果最差。值得一提的是,纪小龙等〔1〕曾对43种抗体进行了微波辐射和高压加热对比观察。结果发现,17种抗体经高压方法处理后,染色效果明显增强。
致谢:本研究受到第四军医大学王泊云高级实验师的指导,特此感谢!
作者简介:赵玉宁,男,47岁,主管技师
, 百拇医药
宝鸡市东风路45号,Tel.(0917)3415511-6547
参考文献
[1]纪小龙,施作霖.诊断免疫组织化学.北京:军事医学出版社,1997:14~16
[2]Jun jie C,Hongming Q.Application of vacuum cabinet in immunohistochemi calstaining.Cell Vision,1995;2(2):142~145
[3]蔡俊杰,邱红明.真空负压、微波辐射种电炉三种不同处理方法对抗原修复的比较研究.细胞与分子免疫学杂志,1997;13(增刊1):24~26
[4]MasonJT,OlearyTJ.Effectsof formaldehyde fixation on protein secondary structure: a calorimetric and infrared spectroscopic investigation. J Histochem Cytochem, 1991; 39: 225~227
(收稿 1998-03-18 修回 1998-04-06), 百拇医药
单位:赵玉宁 范智勇(解放军第三医院病理科,陕西宝鸡721004)
关键词:
细胞与分子免疫学杂志990129
常规免疫组织化学染色难以使癌基因、抑癌基因及其产物显示满意的效果。应用高温对组织抗原进行修复,可有效地暴露抗原决定簇而增强免疫组织化学染色的结果〔1〕。据此,我们应用了4种不同的加热法,对胶质瘤组织抗原的修复进行了对比研究。
1 材料和方法
1.1 材料 为我科收集的外科检查确诊为胶质瘤的标本,共80例,均经10%福尔马林液固定,石蜡包埋。每例做连续4μm切片20张,附贴于涂有多聚-L-赖氨酸的玻片上,置60℃烤箱内烘烤
, 百拇医药
4h。P16,Rb,EGFR,CyclinD1及S-P试剂盆,均为美国Maxim Biotech公司产品;多聚-L-赖氨酸购自福州迈新生物技术公司。
1.2 方法 ①高压锅直接煮沸法:切片脱蜡至水→蒸馏水洗(2×1min/次)→置柠檬酸缓冲液(pH6.0)中,电炉加热至喷气并持续2min→自来水冲压力锅使之冷却至室温后,取出切片→蒸馏水洗(2×1min/次)→PBS液(pH7.2)洗(2×3min/次)→S-P染色。②微波辐射法:切片脱蜡至水→3%H2O2甲醇处理10min→蒸馏水洗(3×2min/次)→置0.01mol/L柠檬酸缓冲液(pH6.0)中,于92℃~95℃下微波辐射10min→冷却至室温后,取出切片→PBS(pH7.2)洗(3×2min/次)→S-P染色。③真空负压干燥箱加热法:切片脱蜡至水→置0.3%H2O2甲醇中,真空负压处理5min〔2〕→自来水洗(1min)→置0.01mol/L柠檬酸缓冲液(pH6.0)中,放入95℃真空恒温干燥箱中,真空负压处理10min→PBS(pH7.2)洗(3×1min/次)→真空负压染色〔3〕。④电炉加热法:切片脱蜡至水→蒸馏水洗(2×1min/次),→3%H2O2甲醇室温度处理1min→自来水洗(1min),蒸馏水洗(2×1min/次)→置0.01mol/L柠檬酸缓冲液(pH6.0)中电炉加热,反复持续10min,离开电源,冷却至室温→PBS(pH7.2)洗(3×2min/次)→SP染色。
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1.3 对照设置 阳性对照片购自迈新公司,以PBS液置换一抗作为阴性对照;以未经抗原修复的切片进行S-P染色作为阳性对照。
1.4 统计学处理 采用x2检验
2 结果
P16阳性颗粒主要位于胞浆中(图1A);Rb和CyclinD1阳性颗粒主要位于胞核和胞浆(图1Ba和Bb);EGFR阳性颗粒主要位于胞膜(图1C)。本试验将染色结果按阳性细胞的范围分为:“-”阳性细胞数<10%;“+”阳性细胞数占10%~25%;“++”阳性细胞数占25%~50%;“+++”阳性细胞数>50%。具体染色结果见表1。
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图1 胶质瘤的免疫组化染色结果(×400)
A:胶质瘤Ⅱ级P16染色呈阳性;Ba:胶质瘤Ⅱ级Rb染色呈阳性;
Bb:胶质瘤Ⅳ级CyclinD1染色呈阳性;C:胶质瘤Ⅱ级EGFR染色呈阳性
表1 4种不同抗原修复法的免疫组化染色(n=80) 抗原修复法
D16
Rb
EGFR
CyclinD1
电-
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炉+
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16
21
16
加++
4
7
16
7
热++
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0
1
3
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高-
50
38
26
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压+
22
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对-
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照+
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注:4种方法与对照组比较,P<0.001;*与电炉加热法比较,P<0.05;#与高温加热法比较P<0.01;#*与真空负压法比较,P>0.05
3 讨论
组织标本在用甲醛固定过程中,常因形成醛键、羧甲基,或蛋白与蛋白之间发生交联封闭了抗原决定簇,而使免疫组织化学标记的的敏感性明显降低。有研究表明〔3,4〕,经福尔马林固定后的组织要获得更好的免疫组化染色结果,必须在适当的高温下进行抗原修复。
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高温组织抗原修复法(AR)是将切片置于柠檬酸缓冲液中,应用各种不同的加热方法使温度达到92℃以上并持续一段时间,以使被封闭的抗原决定簇得以重新暴露和修复,这样抗原、抗体便可更好地结合。本研究中应用了4种不同的加热方法进行AR,并与对照组进行了对比研究。结果显示:4种加热方法中,以真空负压加热法和微波辐射法的染色效果较好;但在操作过程中,各有优点。真空负压法加热的温度均匀恒定,方法简便,不受条件限制,不会使柠檬酸缓冲液沸腾,不易脱片,成功率高,但抽气管易软化。微波辐射法使用方便,但温度不易掌握,缓冲液沸腾可导致脱片,且金属仪器均不能使用。高压加热法的染色效果稍差,电炉直接加热法的染色效果最差。值得一提的是,纪小龙等〔1〕曾对43种抗体进行了微波辐射和高压加热对比观察。结果发现,17种抗体经高压方法处理后,染色效果明显增强。
致谢:本研究受到第四军医大学王泊云高级实验师的指导,特此感谢!
作者简介:赵玉宁,男,47岁,主管技师
, 百拇医药
宝鸡市东风路45号,Tel.(0917)3415511-6547
参考文献
[1]纪小龙,施作霖.诊断免疫组织化学.北京:军事医学出版社,1997:14~16
[2]Jun jie C,Hongming Q.Application of vacuum cabinet in immunohistochemi calstaining.Cell Vision,1995;2(2):142~145
[3]蔡俊杰,邱红明.真空负压、微波辐射种电炉三种不同处理方法对抗原修复的比较研究.细胞与分子免疫学杂志,1997;13(增刊1):24~26
[4]MasonJT,OlearyTJ.Effectsof formaldehyde fixation on protein secondary structure: a calorimetric and infrared spectroscopic investigation. J Histochem Cytochem, 1991; 39: 225~227
(收稿 1998-03-18 修回 1998-04-06), 百拇医药