5′端帽状结构对乙脑病毒RNA稳定性和感染性的作用
作者：黄庆生 姜绍谆 马文煜 张富泉 樊英茹 肖毅 刘利兵
单位：第四军医大学微生物学教研室，西安，710032
关键词：
细胞与分子免疫学杂志990226
5′端帽状结构对多数病毒RNA的稳定性和感染性具有重要作用，而对另一些病毒的RNA则非必需〔1～3〕。乙脑病毒基因组为单股正链RNA，长约11kb，5′端有帽状结构，3′端无PolyA〔4，5〕。为了验证5′mGpppA对乙脑病毒RNA稳定性和感染性的作用，我们采用本室构建的乙脑病毒感染性克隆(乙脑病毒全长cDNA,克隆于T7启动子下游)体外转录出感染性RNA(即感染性转录体)，对在转录反应中掺入与不掺入5′mGpppA所获得的RNA,在转染BHK细胞后的病变效应及免疫荧光强弱是否相同，确定5′mGpppA对乙脑病毒RNA稳定性和感染性的作用。
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1 材料和方法
1.1 材料 乙脑病毒全长cDNA克隆为本室构建。T7RNA聚合酶购自日本宝生物公司(Takara)，5′mGpppA购自宝灵曼公司；rNTP购自Promega公司；RNasin和脂质体购自GIBCO/BRL公司。
1.2 方法〔6，7〕 10μg含JEVcDNA的克隆载体，用ScaI在JEVcDNA末端切开，使呈线状。分A、B两组，每组均含下列成分：5μg线状DNA，10mmol/LrNTP各5μl，RNasin 20U，10×buffer 5μl T7 RNA 聚合酶35U，A组加100 mmol/L5′mGpppA2μl，B组不加5′mGpppA。两组各补加无RNA酶的去离子水至50μl，37℃3h。将两组转录产物分别加入150μl无血清的RPMI-1640中(含20μl的脂质体)，轻轻混匀，转入35mm培养碟的BHK单层细胞中(细胞已用无血清的RPMI-1640洗两遍)，补加300μl无血清RPMI-1640，37℃3h后弃去碟中液体，加入2ml含2%小牛血清的RPMI-1640，37℃培养，观察病变结果。同时设只加脂质体不加转录产物的阴性对照。将上述A、B两组细胞及阴性对照细胞，观察1周后固定，用抗乙脑病毒的mAb做免疫荧光染色，确定病变是否特异及比较荧光强弱。
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2 结果和讨论
加5′mGpppA组与不加5′mGpppA组在第5天都开始出现病变，到第7天两组细胞的病变基本相同，大约达到“+++”(约70%～80%细胞产生病变)，而阴性对照组细胞则无病变。mAb荧光染色结果表明，细胞病变为特异性的，A、B两组都出现较强的特异性荧光，阴性对照组无特异性荧光。
对RNA病毒而言，一般认为帽状结构可增加RNA的感染性，这可能与其可提高翻译效率、增加RNA的稳定性和防止宿主细胞对RNA的降解有关。但从本实验结果看，裸露的乙脑病毒RNA带不带有5′mGpppA对其感染性和稳定性看不出有何影响。而天然的乙脑病毒RNA都带有帽状结构，这一结构究竞对该病毒的转录与翻译起何作用？有待于进一步探讨。而阐明这些机理对RNA病毒的分子生物学研究则有重要的意义。
作者简介：黄庆生，男，35岁，博士生。西安市长乐西路17号,Tel.(029)3374526
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参考文献
[1]兰水云，袁正宏.RNA病毒感染性转录体的制备.国外医学微生物学分册,1998;21(1):1～4
[2]PoLo S, Ketner G, Levis R, et al. Infectious RNA transcripts from full length dengue virus type 2 cDNA clones made in yeast. J Virol, 1997; 71(7):5366～5377
[3]Sit TL, Abouhaidar MG. Infectious RNA trancripts derived from cloned cDNA of papaya mosaic virus: effect of mutation to the capsid and polymerase proteins. J Gen Viro， 1993; 74(pt6):1133～1140
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[4]Sumiyoshi H,Mori C,Fuke I，et al. Complete nucleotide sequence of Japanese encephalitis virus genomic RNA.Virol,1987;161:497～510
[5]Nitayaphan S, Grant JA, Chang GJ， et al. Nucleotide sequence of the virulent SA- 14 strain of Japanese encephalitis virus and its attenuated vaccine derivative SA-14-142.Virol,1990;177:541～552
[6] Rice CM,Grakoui A,Galler R，et al. Transcription of infectious yellow fever RNA from full length cDNA templates produced by in vitro ligation.New Biol,1989;1:285～296
[7]Sumyoshi H,Hoke CH,Trent DW，et al. Infectious Japanese encephalitis virus RNA can be synthesized from in vitro ligated cDNA templateds.J Virol,1992;66(9):5425～ 5431
收稿：1999-02-23
修回：1999-03-15, 百拇医药
单位：第四军医大学微生物学教研室，西安，710032
关键词：
细胞与分子免疫学杂志990226
5′端帽状结构对多数病毒RNA的稳定性和感染性具有重要作用，而对另一些病毒的RNA则非必需〔1～3〕。乙脑病毒基因组为单股正链RNA，长约11kb，5′端有帽状结构，3′端无PolyA〔4，5〕。为了验证5′mGpppA对乙脑病毒RNA稳定性和感染性的作用，我们采用本室构建的乙脑病毒感染性克隆(乙脑病毒全长cDNA,克隆于T7启动子下游)体外转录出感染性RNA(即感染性转录体)，对在转录反应中掺入与不掺入5′mGpppA所获得的RNA,在转染BHK细胞后的病变效应及免疫荧光强弱是否相同，确定5′mGpppA对乙脑病毒RNA稳定性和感染性的作用。
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1 材料和方法
1.1 材料 乙脑病毒全长cDNA克隆为本室构建。T7RNA聚合酶购自日本宝生物公司(Takara)，5′mGpppA购自宝灵曼公司；rNTP购自Promega公司；RNasin和脂质体购自GIBCO/BRL公司。
1.2 方法〔6，7〕 10μg含JEVcDNA的克隆载体，用ScaI在JEVcDNA末端切开，使呈线状。分A、B两组，每组均含下列成分：5μg线状DNA，10mmol/LrNTP各5μl，RNasin 20U，10×buffer 5μl T7 RNA 聚合酶35U，A组加100 mmol/L5′mGpppA2μl，B组不加5′mGpppA。两组各补加无RNA酶的去离子水至50μl，37℃3h。将两组转录产物分别加入150μl无血清的RPMI-1640中(含20μl的脂质体)，轻轻混匀，转入35mm培养碟的BHK单层细胞中(细胞已用无血清的RPMI-1640洗两遍)，补加300μl无血清RPMI-1640，37℃3h后弃去碟中液体，加入2ml含2%小牛血清的RPMI-1640，37℃培养，观察病变结果。同时设只加脂质体不加转录产物的阴性对照。将上述A、B两组细胞及阴性对照细胞，观察1周后固定，用抗乙脑病毒的mAb做免疫荧光染色，确定病变是否特异及比较荧光强弱。
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2 结果和讨论
加5′mGpppA组与不加5′mGpppA组在第5天都开始出现病变，到第7天两组细胞的病变基本相同，大约达到“+++”(约70%～80%细胞产生病变)，而阴性对照组细胞则无病变。mAb荧光染色结果表明，细胞病变为特异性的，A、B两组都出现较强的特异性荧光，阴性对照组无特异性荧光。
对RNA病毒而言，一般认为帽状结构可增加RNA的感染性，这可能与其可提高翻译效率、增加RNA的稳定性和防止宿主细胞对RNA的降解有关。但从本实验结果看，裸露的乙脑病毒RNA带不带有5′mGpppA对其感染性和稳定性看不出有何影响。而天然的乙脑病毒RNA都带有帽状结构，这一结构究竞对该病毒的转录与翻译起何作用？有待于进一步探讨。而阐明这些机理对RNA病毒的分子生物学研究则有重要的意义。
作者简介：黄庆生，男，35岁，博士生。西安市长乐西路17号,Tel.(029)3374526
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参考文献
[1]兰水云，袁正宏.RNA病毒感染性转录体的制备.国外医学微生物学分册,1998;21(1):1～4
[2]PoLo S, Ketner G, Levis R, et al. Infectious RNA transcripts from full length dengue virus type 2 cDNA clones made in yeast. J Virol, 1997; 71(7):5366～5377
[3]Sit TL, Abouhaidar MG. Infectious RNA trancripts derived from cloned cDNA of papaya mosaic virus: effect of mutation to the capsid and polymerase proteins. J Gen Viro， 1993; 74(pt6):1133～1140
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[4]Sumiyoshi H,Mori C,Fuke I，et al. Complete nucleotide sequence of Japanese encephalitis virus genomic RNA.Virol,1987;161:497～510
[5]Nitayaphan S, Grant JA, Chang GJ， et al. Nucleotide sequence of the virulent SA- 14 strain of Japanese encephalitis virus and its attenuated vaccine derivative SA-14-142.Virol,1990;177:541～552
[6] Rice CM,Grakoui A,Galler R，et al. Transcription of infectious yellow fever RNA from full length cDNA templates produced by in vitro ligation.New Biol,1989;1:285～296
[7]Sumyoshi H,Hoke CH,Trent DW，et al. Infectious Japanese encephalitis virus RNA can be synthesized from in vitro ligated cDNA templateds.J Virol,1992;66(9):5425～ 5431
收稿：1999-02-23
修回：1999-03-15, 百拇医药