脱位牙及其处理原则
作者：江卫民 史俊南
单位：江卫民(第四军医大学口腔医学院，陕西 西安 710032)；史俊南(第四军医大学口腔医学院，陕西 西安 710032)
关键词：脱位牙； 再植术； 再植原则
牙体牙髓牙周病学杂志00339 【中图号】 R782.12 【文献标识码】 A
【文章编号】 1005-25 93(2000)03-0184-03
牙脱位是一种少发但涉及多种组织的复合性损伤。目前常用处理方法的效 果尚不确定[1]。牙脱位时，龈上皮撕裂，牙周膜分离，牙骨质与牙槽骨受到破坏 ，牙髓神经、血 管断裂。再植牙的愈合是一个复杂的过程，取决于损伤组织细胞的修复潜能和速率，并且与 脱位时情况、再植时的处理以及患者的具体情况有关。因此，充分了解影响再植牙愈合的因 素及各因素间的关系，能为临床上提供更好的处理原则。
, 百拇医药
1 再植后的愈合
再植牙最佳愈合方式是牙周膜愈合。通过在猴子体内进行的试验证实可以获得这种愈合。但 在人体上还缺乏形成牙周膜愈合的充分证据。
动物试验表明，牙周膜在脱位时损伤越小，再植后成功率越高[2]。脱位牙在口外 滞留时间过长所导致的牙周膜细胞干燥，以及保存于不合适的介质中是牙周膜细胞破坏的主 要原因。牙再植最差的后果是牙根全部吸收、牙冠脱落[3]。
再植牙的牙根吸收主要是外吸收，可分成三类，即表面吸收(surface resorption)、替代性 吸收(replacement resorption)和炎性吸收(inplammatory resorption)[3]。
表面吸收是一种发生在正常牙骨质更新过程的现象，具有自限性[2]。也出现在再 植牙愈合过程中。为牙骨质和外层牙本质上小的、表浅凹陷性吸收，牙周膜无炎症反应 [ 3]。再植牙的表面吸收主要与脱位过程和再植时的处理有关。牙脱位后，牙周膜受到机 械性损伤，再植后发生的吸收主要是一种修复过程，有利于牙周膜纤维重新附着于新生的牙 骨质内。表面吸收还发生在牙周膜局部性坏死中或成牙骨质细胞损伤区。当内层的牙周膜遭 到破 坏，巨噬细胞开始吞噬受损伤的组织，清除遭到破坏的组织，这可使牙骨质暴露，进而被破 骨细胞吸收。而坏死组织的分解产物又可作为趋化因子吸引破骨细胞至暴露的牙骨质处。之 后 ，牙周膜和毗邻的牙骨质开始修复，抑制了吸收的进一步发展[4]。因此，Hammar stron等根据组织学特征将其定义为伴随少量坏死的根吸收[4]。
, 百拇医药
牙脱位时，若牙周膜损伤严重或大范围丧失，再植后愈合可能从牙槽窝中的牙槽骨一侧开始 ， 并最终导致牙齿与牙槽骨形成骨性粘连。这是脱位牙再植后常见的一种愈合形式。研究发现 ，当再植前机械去除部分或全部牙周膜，将导致牙骨性粘连的发生[5]。
替代性吸收是指牙槽骨重建过程中牙根融入牙槽骨，并被骨组织逐渐替代的过程。这种愈合 虽 然不是理想的愈合形式，但亦非病理性愈合，因为破骨细胞不能鉴别骨、牙本质和牙骨质 [6]。替代性吸收最终导致牙根失去支持组织、感染、冠折。动物试验表明，再植牙的 根表面有大量来源于骨内膜间隙和骨髓腔的成骨细胞和破骨细胞，骨内膜间隙含有这些细胞 的前体细胞池，因而成骨细胞和破骨细胞能够源源不断向根表面迁移、聚集。牙周膜的物理 和生化变化可以影响前体细胞表达的表型[7]。
炎性吸收是再植牙牙根的一种渐进性吸收过程。X线片表现为牙根、附近骨质进行性透光区 ， 碗状的缺陷渗入牙本质。组织学表现为吸收区有大量的淋巴细胞、浆细胞、多形核白细胞和 肉芽组织等炎症因子浸润。此外，吸收的根表面出现许多吸收空隙(Howship's lacunae)， 偶见破骨细胞[3]。
, http://www.100md.com
传统观点认为，感染是发生炎性根吸收的主要原因。牙脱位后，牙周膜和牙骨质覆盖被破坏 ，保护功能丧失，因脱位而致感染牙髓的毒素可以通过牙本质小管渗透到牙周间隙引起炎症 反应，导致牙齿结构迅速丧失。然而，传统观点难以解释下面的现象，在16个发生根炎性吸 收的牙中只有8个检测到细菌。而且，Andreasen亦发现在再植后两周炎性吸收开始出现时， 牙本质小管中检测不到细菌，怀疑可能有一些非感染坏死组织起动和维持了炎性吸收的过程 ，并认为破骨细胞可能在此过程中起着重要的作用[3,8]。
2 脱位牙的再植原则
2.1 脱位牙的再植时间及贮存介质
脱位牙再植越早越好，越早越容易形成牙周膜愈合，根吸收发生越少[9]。有临床 报 告认为，即刻再植(在5min之内)是牙周膜愈合的关键[10]。如果再植延长到8min ，则牙周膜愈合率降低到50%。此结论与体外关于再植牙滞留时间和贮存介质对人牙周膜前 体 细胞繁殖力影响的研究结果一致。繁殖力(clonogeaic)是衡量牙周膜前体细胞增殖力的指标 。在室温条件下干燥30min，具有繁殖力的牙周膜细胞不到30%，由此可以推论，再植牙愈合 后结果差的原因是牙周膜中具有繁殖力的细胞在短时间内迅速减少所致[11]。
, 百拇医药
通常情况下，脱位牙难以即刻再植。因此脱位牙即时、有效的保存便尤为重要。生 理性贮存介质如牛奶、生理盐水、平衡盐、组织培养液或者涎液均可选择。研究发现冷牛奶 (4℃)对维持牙周膜的细胞活力优于室温(23℃)保存，干燥保存或自来水保存将大大降低牙 周膜细胞的活力，导致根吸收的增加[3]。
2.2 前牙和牙槽窝的处理
传统上一直认为再植前应去除牙槽窝中的血凝块。此观点并未在人体进行研究，动物试 验得出的结论是相冲突的。Andreasen对猴进行的研究发现，再植前去除与未去除血凝块 对牙周愈合无显著差别。Matsson等观察到：拔除狗的试验牙后持续冲洗牙槽窝30min(用生 理盐水)有利于牙周愈合。由于这些研究采用的处理方法不同，难以得出统一的结论。但And reason的试验模型更接近于临床实际情况，因为在事故现场能够即刻对牙槽窝持续进行冲洗 的情况是不多见的[3]。
, 百拇医药
2.3 夹板固定
牙再植后行夹板固定已成常规。夹板的作用不仅仅是固定愈合初期的再植牙，同时也允许再 植牙有一定的动度。以减少牙骨粘连的发生。应尽量缩短固定时间，半固定(生理性) 以7～10d为宜[12]。
2.4 抗生素的应用
再植后服用抗生素的目的是预防感染。但其效果在临床上并未得到充分证实。Hammarstrom 等动物研究发现，拔牙前和再植后即刻注射抗生素能够减少炎性根吸收的发生。但这种方法 却难以应用到人身上。因此临床上应根据实验情况有选择地应用抗生素[3]。
2.5 牙髓治疗
过去牙髓治疗及充填都是在口外完成。美国牙髓病学协会(AAE)在1994年的治疗指南中则 建议：为缩短口外滞留时间，牙髓处理应在再植后进行。若再植牙的根尖孔已关闭或再植牙 在口外滞留时间超过2h，牙髓处理也可在再植前进行。其目的是为了控制感染，预防炎 性根吸收[13]。再植牙的牙髓处理包括三个方面，即去髓、暂时性根管药物的应用 (通常为氢氧化钙)、根管永久性充填。
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2.5.1 去髓的时间
再植牙的去髓时间目前普遍选择再植后7～14d。未行牙髓处理的再植牙极易发生炎性 根吸 收[14]。但对牙根发育未完成或再植前口外滞留时间不超过2h的，一般主张推迟牙 髓治疗时间，以使牙髓获得再血管化。再植牙“牙髓的长度”和在口外滞留的情况是预测牙 髓再血管化最主要的因素。“较短的牙髓长度”比“较长的牙髓长度”更易获得再血管化 。有研究报 告，在具有再血管化潜力的牙中，大约18%～34%牙能获得再血管化[15]。这些牙在 口 外滞留时间都不超过45min[3]。根据此结果，联系实际存在的脱位牙都难以获得适 当的处理等因素，2h这个临界点在今后的实践中值得再考虑。
对发育即将完成的脱位牙，即使脱位后获得适当的处理，牙髓也大部分趋于坏死而难以获得 再血管化。由于炎性根吸收会导致牙齿结构的迅速丧失。因此在处理青少年患者时，决定尝 试使再植牙获得再血管化之前应仔细权衡各种利弊。
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2.5.2 根管过渡性药物的应用
再植牙去髓后应用非固化氢氧化钙(CH)作为过渡性药物已成为常规。CH的碱性特征能够抑制 根管内细菌活性，促使残余牙髓坏死，从而抑制炎性根吸收的发展。在未成熟牙齿，CH还具 有促进根尖孔形成作用，使根管内充填物凝缩[3]。当然，CH对再植牙牙周膜是有 害的。若牙根缺乏完整的牙骨质层，CH的OH-能够扩散到牙周间隙。体外研究显示，在剥 脱 的牙骨质区pH值达到9～10。动物试验发现CH既能干扰形成性细胞，如牙周膜前体细胞、成 纤维细胞、成牙骨质细胞和成骨细胞的活性，又能影响吸收性细胞，如破骨细胞、破牙骨质 细胞和破牙本质细胞的活性[16]。由于CH对牙周组织作用的双重性，再植 早期不提倡使用。一般推迟到再植后的7～14d，牙周膜初步愈合后。
AAE 所推荐的CH应用时间从1983到1994年也有所变化。1983年，其推荐 CH的应用时间最短 为6个月，最长为12个月。1994年修订后提议CH处理后7～14d即可进行根管充填[3 ]。Trop等对比了CH短期(7d)和长期(8周)应用对牙周膜愈合的影响。发现二者无显 著差异[17]。但作者同时指出，CH的长期应用比短期应用的效果更具可预测性。 随后的研究进一步证实，已发生炎性根吸收的牙长期应用CH的效果优于短期应用[1 6] 。但Dumsha等观察结果却表明，临床应用CH 14d和7个月的治疗效果无显著差异，并建议 可在再植14d后行根管最终充填[18]。由于上述试验均是在实验室条件下完 成 的，脱位牙口外滞留时间极短。因此，如果再植牙在体外不超过30min，短期应用CH合适 者，长期应用也无害。若再植牙已有炎性根吸收，则应选择长期应用。
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2.5.3 再植牙的根管充填
用根管糊剂和牙胶尖充填根管是再植牙最终的牙髓治疗。
【参考文献】
[1] Protocols for clinical pediatric dentistry. 3rd ed. Boston. J Ped odont, 1995,31
[2] Andreasen JO. Effect of extra-alveolar period and storage media u pon periodo ntal and pulpal healing after replantation of nature permanent incisors in monke ys. Int J Oral Surg, 1981,10:43
, http://www.100md.com [3] Barret EJ, Kenny DJ. Avulsed permanent teeth: a review of the literature and treatmemt guidelines. Endod Dent Traumatol, 1997,13:153
[4] Hammarstrom L. Lindskog S. Factors regulating and modifying denta l root resorption. Proc Finn Dent Soc, 1992,88(suppl 1):115
[5] Tronstad L. Root resorption-etiology, terminology and clinical ma nifestations. Endod Dent Traumatol, 1988,4:241
[6] Hammarstrom L, Blomlof L. Dynamics of dentoaveolar ankyl osis and associated root resorption. Endod Dent Traumatol, 1989,5:163
, 百拇医药
[7] Andreason JO, Andreasen FM. Root resorption following traumatic d ental injuries. Proc Finn Dent Soc, 1992,88(suppl 1): 95
[8] Andersson L, Bondin I. Avulsed human teeth replanted within 15 m inutes—a long-term clinical follow-up study. Endod Dent traumatol 1990,6:37
[9] Andreasen JO. Borum M. Replantation of 400 avulsed permanent inc isors 4. Factors related to periodontal ligament healing. Endod Dent Traumatol, 1995,11:76[ ZK)〗
, 百拇医药
[10] Lekic P, Kenny D. Relationship of clonogenic capacity to platin g effeciency and vital dye staining of human periodontal ligament cells: implic ations for to oth replantation. J Periodontal Res, 1996,31:294
[11] Oikarnen K. Tooth splinting: a review of the literature and cons ideration o f the versatility of a wire-composite splint. Endod Dent Traumatol, 1990,6:637[ ZK)〗
[12] Hammarstriom L, Blomlof L, Feiglin B, et al. Replantation of teeth and antibiotic treatment. Endod Dent Traumatol, 1986,2:51
, 百拇医药
[13] American Association of Endodontists. Recommend guideline for the treatment of the avulsed tooth. Chicago, 1994
[14] Andreasen J, Borum M. Replantation of 400 avulced permanent inc isors 2: Factors related to pulpal healing. Endod Dent Traumatol, 1995,11:59
[15] Trope M, Moshonov J. Short vs long-term calcium hydroxi de treatment of established inflammatory root resorption in replanted dog tooth . Endod Dent Traumatol, 1995,11:124
, 百拇医药
[16] Trope M, Yesiloy C. Effect of different endodontic treatment pro tocols on periodontal repair and root resorption of replanted dog teeth. J Endod , 1992,18:492
[17] Dumsha T, Hovland E. Evaluation of long-term calcium hydroxide tr eatment in avulsed teeth——an in vivo study. Int Eudod Traumatol, 1995,11:1 24
收稿日期：1998-04-29, 百拇医药
单位：江卫民(第四军医大学口腔医学院，陕西 西安 710032)；史俊南(第四军医大学口腔医学院，陕西 西安 710032)
关键词：脱位牙； 再植术； 再植原则
牙体牙髓牙周病学杂志00339 【中图号】 R782.12 【文献标识码】 A
【文章编号】 1005-25 93(2000)03-0184-03
牙脱位是一种少发但涉及多种组织的复合性损伤。目前常用处理方法的效 果尚不确定[1]。牙脱位时，龈上皮撕裂，牙周膜分离，牙骨质与牙槽骨受到破坏 ，牙髓神经、血 管断裂。再植牙的愈合是一个复杂的过程，取决于损伤组织细胞的修复潜能和速率，并且与 脱位时情况、再植时的处理以及患者的具体情况有关。因此，充分了解影响再植牙愈合的因 素及各因素间的关系，能为临床上提供更好的处理原则。
, 百拇医药
1 再植后的愈合
再植牙最佳愈合方式是牙周膜愈合。通过在猴子体内进行的试验证实可以获得这种愈合。但 在人体上还缺乏形成牙周膜愈合的充分证据。
动物试验表明，牙周膜在脱位时损伤越小，再植后成功率越高[2]。脱位牙在口外 滞留时间过长所导致的牙周膜细胞干燥，以及保存于不合适的介质中是牙周膜细胞破坏的主 要原因。牙再植最差的后果是牙根全部吸收、牙冠脱落[3]。
再植牙的牙根吸收主要是外吸收，可分成三类，即表面吸收(surface resorption)、替代性 吸收(replacement resorption)和炎性吸收(inplammatory resorption)[3]。
表面吸收是一种发生在正常牙骨质更新过程的现象，具有自限性[2]。也出现在再 植牙愈合过程中。为牙骨质和外层牙本质上小的、表浅凹陷性吸收，牙周膜无炎症反应 [ 3]。再植牙的表面吸收主要与脱位过程和再植时的处理有关。牙脱位后，牙周膜受到机 械性损伤，再植后发生的吸收主要是一种修复过程，有利于牙周膜纤维重新附着于新生的牙 骨质内。表面吸收还发生在牙周膜局部性坏死中或成牙骨质细胞损伤区。当内层的牙周膜遭 到破 坏，巨噬细胞开始吞噬受损伤的组织，清除遭到破坏的组织，这可使牙骨质暴露，进而被破 骨细胞吸收。而坏死组织的分解产物又可作为趋化因子吸引破骨细胞至暴露的牙骨质处。之 后 ，牙周膜和毗邻的牙骨质开始修复，抑制了吸收的进一步发展[4]。因此，Hammar stron等根据组织学特征将其定义为伴随少量坏死的根吸收[4]。
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牙脱位时，若牙周膜损伤严重或大范围丧失，再植后愈合可能从牙槽窝中的牙槽骨一侧开始 ， 并最终导致牙齿与牙槽骨形成骨性粘连。这是脱位牙再植后常见的一种愈合形式。研究发现 ，当再植前机械去除部分或全部牙周膜，将导致牙骨性粘连的发生[5]。
替代性吸收是指牙槽骨重建过程中牙根融入牙槽骨，并被骨组织逐渐替代的过程。这种愈合 虽 然不是理想的愈合形式，但亦非病理性愈合，因为破骨细胞不能鉴别骨、牙本质和牙骨质 [6]。替代性吸收最终导致牙根失去支持组织、感染、冠折。动物试验表明，再植牙的 根表面有大量来源于骨内膜间隙和骨髓腔的成骨细胞和破骨细胞，骨内膜间隙含有这些细胞 的前体细胞池，因而成骨细胞和破骨细胞能够源源不断向根表面迁移、聚集。牙周膜的物理 和生化变化可以影响前体细胞表达的表型[7]。
炎性吸收是再植牙牙根的一种渐进性吸收过程。X线片表现为牙根、附近骨质进行性透光区 ， 碗状的缺陷渗入牙本质。组织学表现为吸收区有大量的淋巴细胞、浆细胞、多形核白细胞和 肉芽组织等炎症因子浸润。此外，吸收的根表面出现许多吸收空隙(Howship's lacunae)， 偶见破骨细胞[3]。
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传统观点认为，感染是发生炎性根吸收的主要原因。牙脱位后，牙周膜和牙骨质覆盖被破坏 ，保护功能丧失，因脱位而致感染牙髓的毒素可以通过牙本质小管渗透到牙周间隙引起炎症 反应，导致牙齿结构迅速丧失。然而，传统观点难以解释下面的现象，在16个发生根炎性吸 收的牙中只有8个检测到细菌。而且，Andreasen亦发现在再植后两周炎性吸收开始出现时， 牙本质小管中检测不到细菌，怀疑可能有一些非感染坏死组织起动和维持了炎性吸收的过程 ，并认为破骨细胞可能在此过程中起着重要的作用[3,8]。
2 脱位牙的再植原则
2.1 脱位牙的再植时间及贮存介质
脱位牙再植越早越好，越早越容易形成牙周膜愈合，根吸收发生越少[9]。有临床 报 告认为，即刻再植(在5min之内)是牙周膜愈合的关键[10]。如果再植延长到8min ，则牙周膜愈合率降低到50%。此结论与体外关于再植牙滞留时间和贮存介质对人牙周膜前 体 细胞繁殖力影响的研究结果一致。繁殖力(clonogeaic)是衡量牙周膜前体细胞增殖力的指标 。在室温条件下干燥30min，具有繁殖力的牙周膜细胞不到30%，由此可以推论，再植牙愈合 后结果差的原因是牙周膜中具有繁殖力的细胞在短时间内迅速减少所致[11]。
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通常情况下，脱位牙难以即刻再植。因此脱位牙即时、有效的保存便尤为重要。生 理性贮存介质如牛奶、生理盐水、平衡盐、组织培养液或者涎液均可选择。研究发现冷牛奶 (4℃)对维持牙周膜的细胞活力优于室温(23℃)保存，干燥保存或自来水保存将大大降低牙 周膜细胞的活力，导致根吸收的增加[3]。
2.2 前牙和牙槽窝的处理
传统上一直认为再植前应去除牙槽窝中的血凝块。此观点并未在人体进行研究，动物试 验得出的结论是相冲突的。Andreasen对猴进行的研究发现，再植前去除与未去除血凝块 对牙周愈合无显著差别。Matsson等观察到：拔除狗的试验牙后持续冲洗牙槽窝30min(用生 理盐水)有利于牙周愈合。由于这些研究采用的处理方法不同，难以得出统一的结论。但And reason的试验模型更接近于临床实际情况，因为在事故现场能够即刻对牙槽窝持续进行冲洗 的情况是不多见的[3]。
, 百拇医药
2.3 夹板固定
牙再植后行夹板固定已成常规。夹板的作用不仅仅是固定愈合初期的再植牙，同时也允许再 植牙有一定的动度。以减少牙骨粘连的发生。应尽量缩短固定时间，半固定(生理性) 以7～10d为宜[12]。
2.4 抗生素的应用
再植后服用抗生素的目的是预防感染。但其效果在临床上并未得到充分证实。Hammarstrom 等动物研究发现，拔牙前和再植后即刻注射抗生素能够减少炎性根吸收的发生。但这种方法 却难以应用到人身上。因此临床上应根据实验情况有选择地应用抗生素[3]。
2.5 牙髓治疗
过去牙髓治疗及充填都是在口外完成。美国牙髓病学协会(AAE)在1994年的治疗指南中则 建议：为缩短口外滞留时间，牙髓处理应在再植后进行。若再植牙的根尖孔已关闭或再植牙 在口外滞留时间超过2h，牙髓处理也可在再植前进行。其目的是为了控制感染，预防炎 性根吸收[13]。再植牙的牙髓处理包括三个方面，即去髓、暂时性根管药物的应用 (通常为氢氧化钙)、根管永久性充填。
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2.5.1 去髓的时间
再植牙的去髓时间目前普遍选择再植后7～14d。未行牙髓处理的再植牙极易发生炎性 根吸 收[14]。但对牙根发育未完成或再植前口外滞留时间不超过2h的，一般主张推迟牙 髓治疗时间，以使牙髓获得再血管化。再植牙“牙髓的长度”和在口外滞留的情况是预测牙 髓再血管化最主要的因素。“较短的牙髓长度”比“较长的牙髓长度”更易获得再血管化 。有研究报 告，在具有再血管化潜力的牙中，大约18%～34%牙能获得再血管化[15]。这些牙在 口 外滞留时间都不超过45min[3]。根据此结果，联系实际存在的脱位牙都难以获得适 当的处理等因素，2h这个临界点在今后的实践中值得再考虑。
对发育即将完成的脱位牙，即使脱位后获得适当的处理，牙髓也大部分趋于坏死而难以获得 再血管化。由于炎性根吸收会导致牙齿结构的迅速丧失。因此在处理青少年患者时，决定尝 试使再植牙获得再血管化之前应仔细权衡各种利弊。
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2.5.2 根管过渡性药物的应用
再植牙去髓后应用非固化氢氧化钙(CH)作为过渡性药物已成为常规。CH的碱性特征能够抑制 根管内细菌活性，促使残余牙髓坏死，从而抑制炎性根吸收的发展。在未成熟牙齿，CH还具 有促进根尖孔形成作用，使根管内充填物凝缩[3]。当然，CH对再植牙牙周膜是有 害的。若牙根缺乏完整的牙骨质层，CH的OH-能够扩散到牙周间隙。体外研究显示，在剥 脱 的牙骨质区pH值达到9～10。动物试验发现CH既能干扰形成性细胞，如牙周膜前体细胞、成 纤维细胞、成牙骨质细胞和成骨细胞的活性，又能影响吸收性细胞，如破骨细胞、破牙骨质 细胞和破牙本质细胞的活性[16]。由于CH对牙周组织作用的双重性，再植 早期不提倡使用。一般推迟到再植后的7～14d，牙周膜初步愈合后。
AAE 所推荐的CH应用时间从1983到1994年也有所变化。1983年，其推荐 CH的应用时间最短 为6个月，最长为12个月。1994年修订后提议CH处理后7～14d即可进行根管充填[3 ]。Trop等对比了CH短期(7d)和长期(8周)应用对牙周膜愈合的影响。发现二者无显 著差异[17]。但作者同时指出，CH的长期应用比短期应用的效果更具可预测性。 随后的研究进一步证实，已发生炎性根吸收的牙长期应用CH的效果优于短期应用[1 6] 。但Dumsha等观察结果却表明，临床应用CH 14d和7个月的治疗效果无显著差异，并建议 可在再植14d后行根管最终充填[18]。由于上述试验均是在实验室条件下完 成 的，脱位牙口外滞留时间极短。因此，如果再植牙在体外不超过30min，短期应用CH合适 者，长期应用也无害。若再植牙已有炎性根吸收，则应选择长期应用。
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2.5.3 再植牙的根管充填
用根管糊剂和牙胶尖充填根管是再植牙最终的牙髓治疗。
【参考文献】
[1] Protocols for clinical pediatric dentistry. 3rd ed. Boston. J Ped odont, 1995,31
[2] Andreasen JO. Effect of extra-alveolar period and storage media u pon periodo ntal and pulpal healing after replantation of nature permanent incisors in monke ys. Int J Oral Surg, 1981,10:43
, http://www.100md.com [3] Barret EJ, Kenny DJ. Avulsed permanent teeth: a review of the literature and treatmemt guidelines. Endod Dent Traumatol, 1997,13:153
[4] Hammarstrom L. Lindskog S. Factors regulating and modifying denta l root resorption. Proc Finn Dent Soc, 1992,88(suppl 1):115
[5] Tronstad L. Root resorption-etiology, terminology and clinical ma nifestations. Endod Dent Traumatol, 1988,4:241
[6] Hammarstrom L, Blomlof L. Dynamics of dentoaveolar ankyl osis and associated root resorption. Endod Dent Traumatol, 1989,5:163
, 百拇医药
[7] Andreason JO, Andreasen FM. Root resorption following traumatic d ental injuries. Proc Finn Dent Soc, 1992,88(suppl 1): 95
[8] Andersson L, Bondin I. Avulsed human teeth replanted within 15 m inutes—a long-term clinical follow-up study. Endod Dent traumatol 1990,6:37
[9] Andreasen JO. Borum M. Replantation of 400 avulsed permanent inc isors 4. Factors related to periodontal ligament healing. Endod Dent Traumatol, 1995,11:76[ ZK)〗
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[10] Lekic P, Kenny D. Relationship of clonogenic capacity to platin g effeciency and vital dye staining of human periodontal ligament cells: implic ations for to oth replantation. J Periodontal Res, 1996,31:294
[11] Oikarnen K. Tooth splinting: a review of the literature and cons ideration o f the versatility of a wire-composite splint. Endod Dent Traumatol, 1990,6:637[ ZK)〗
[12] Hammarstriom L, Blomlof L, Feiglin B, et al. Replantation of teeth and antibiotic treatment. Endod Dent Traumatol, 1986,2:51
, 百拇医药
[13] American Association of Endodontists. Recommend guideline for the treatment of the avulsed tooth. Chicago, 1994
[14] Andreasen J, Borum M. Replantation of 400 avulced permanent inc isors 2: Factors related to pulpal healing. Endod Dent Traumatol, 1995,11:59
[15] Trope M, Moshonov J. Short vs long-term calcium hydroxi de treatment of established inflammatory root resorption in replanted dog tooth . Endod Dent Traumatol, 1995,11:124
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[16] Trope M, Yesiloy C. Effect of different endodontic treatment pro tocols on periodontal repair and root resorption of replanted dog teeth. J Endod , 1992,18:492
[17] Dumsha T, Hovland E. Evaluation of long-term calcium hydroxide tr eatment in avulsed teeth——an in vivo study. Int Eudod Traumatol, 1995,11:1 24
收稿日期：1998-04-29, 百拇医药