2.6 大鼠肠外翻吸收实验

    2.6.1 大鼠外翻肠囊模型实验 SD大鼠，在实验前12 h禁食，自由饮水。脱颈处死大鼠后，沿腹中线剪开，小心将大鼠肠管与肠系膜剥离，快速取空肠、回肠各10 cm，放入0 ℃ Tyrode缓冲液中冲洗，将肠内容物冲净为止。将肠管一端结扎于自制圆管，小心翻转并将肠末端结扎成囊状，向肠管中注射2 mL Tyrode缓冲液，作为受药体系，将其置于已有缓冲液的麦氏浴槽中，实验过程中保持37 ℃恒温，并向浴槽中通入95%氧气和5%二氧化碳。平衡5 min后将体系放入装有20 mL肝豆汤醇提物溶液的麦氏浴槽中，分别在15，30，45，60，90，120 min时从肠囊内取样200 μL，同时补足200 μL的空白Tyrode 缓冲液。实验结束后，剪开肠管，自然平摊于滤纸上测量长度和宽度，记录吸收表面积A[7]。

    2.6.2 肠外翻供试品溶液制备 按2.6.1项方法进行实验，制备各时间点不同肠段的样品。取200 μL肠外翻样品，定量加入甲醇400 μL，涡旋混匀，离心取上清液，即得肝豆汤肠外翻供试品溶液。按2.4项色谱条件进行分析，计算各肠段中各成分的累积吸收量(μg)，绘制Q累积吸收量-t曲线，计算吸收速率常数(Ka)[8-9]。

    2.6.3 计算方法 根据以下公式计算药物累积吸收量Q[10]。

    Q累积吸收量= 0.2Cn×V平衡V取样+ 0.2∑n-1i=1Ci

    Q为药物各时间点的累积吸收量(μg) ......