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编号:12007621
Treg\IL-10\IL-6对狼疮性肾炎的影响(2)
http://www.100md.com 2011年2月1日 王文华 郑春盛 陈静 吴文红 李雯
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    参见附件(3811KB,3页)。

     1.2 排除标准 ①妇女妊娠或哺乳期患者;②SLE合并Scr>176μ mol/L;③混合性结缔组织疾病等自身免疫性疾病;④合并有心、脑、造血系统、严重感染等并发症及其他严重原发病、精神病患者。

    1.3 正常对照组 来自福建医科大学附属第一医院健康志愿者,经详细体检及理化等检查,评定无心、脑、肝、肾、肺和内分泌等主要器官系统的实质性病变,共21例,男6例,女15例,年龄23~44岁(26.7±4.59)。

    1.4外周血调节性T细胞测定

    1.4.1 标本采集

    LN患者及正常体检者分别于清晨空腹抽取肝素抗凝血2ml(肝素浓度25U/ml)1管,促凝管2ml1管,所有标本均于采集后1h内处理分析。

    1.4.2 实验试剂 FITC标记CD4、PE标记CD25、Alexa Fluor标记CD127 抗体,CBA试剂盒等均购自美国 BD公司。

    1.4.3 CD4+CD25+CD127loT细的检测

    1.4.3.1 清晨空腹抽取肝素抗凝血2ml(肝素浓度25U/ml),用PBS液1:1稀释,取稀释后的血3ml缓慢加入3ml的淋巴分离液管中,2500r/min离心20min;离心完毕,收集中间层白色云雾状细胞,用2ml PBS液,振荡混匀,1200r/min离心5min, 弃上清液,再用2ml PBS液,振荡混匀,1200r/min离心5min后弃上清液;

    1.4.3.2 用蒸馏水稀释Buffer液,比例为9:1,每管分别加入配制好Buffer液200ul,混匀,平分为两管,设其中一管为阴性管,并加入FITC标记的CD4抗体20μL,混合均匀;设另一管为阳性管,分别加入FITC标记的CD4抗体,PE标记的CD25抗体,Alexa Fluor标记的CD127抗体各20μL,混合均匀;

    1.4.3.3 经上述步骤后完成单细胞悬液的制备和染色,避光静置15分钟,避光完毕后每管分别加入Buffer液400ul,上流式细胞仪检测。

    分析过程如下(分析结果见附图)。

    (1)以FSC为横坐标,侧向散射角(SSC)为纵坐标,将外周血单个核细胞分群,分为中性粒细胞,单核细胞,淋巴细胞和细胞碎片,确定淋巴细胞群。

    (2)在淋巴细胞中以CD4设门,将淋巴细胞分为CD4+T淋巴细胞和CD4-淋巴细胞,计算出CD4+T淋巴细胞占淋巴细胞的比例。

    (3)在CD4+T淋巴细胞中,以CD25设门,计算出CD4+CD25+T淋巴细胞占CD4+T淋巴细胞的比例。

    (4)在CD4+CD25+T淋巴细胞中,以CD25、CD127设门,计算出CD4+CD25+CD127loTreg占CD4+T淋巴细胞的比例。

    注:R1:T lymphocytes; R2:CD4+T cells;

    R3:CD4+CD25+T cells R3:CD4+CD25+T cells

    1.5IL-10、IL-6、IL-4、IL-2、TNF-α、IFN-γ测定

    空腹血样离心后取血清于-20℃保存后统一检测。

    1.5.1 标准品的制备 取流式管10个,用倍比稀释法稀释细胞因子标准液并标记,浓度依次为1250 pg/ml、625 pg/ml、312.5pg/ml、160 pg/ml、80 pg/ml、40 pg/ml、20 pg/ml、10 pg/ml、5pg/ml、0 pg/ml。

    1.5.2 混合人Th1/Th2细胞因子捕获微球 每种细胞因子捕获微球悬液剧烈振荡后各取5ml×检测管数(包括标准管及待测样本管),混匀,2000转离心5min后去上清液,加与上面细胞因子同体积的的血清强化液,混匀,避光30min。

    1.5.3 制备检测样品 将样本取出平衡至室温,取10只标准管及待测样本管,每管加25ul混合的细胞因子捕获微球和25ulPE标记的Th1/Th2类细胞因子抗体,然后分别在标准管中加入25ul已稀释好的细胞因子标准液,待测样本管中加入25ul待测样本,混匀,室温下避光孵育3小时。

    1.5.4 按试剂盒要求,设置微球调整电压。

    1.5.5 流式细胞仪检测 每管中加入500μl 洗涤缓冲液,振荡悬浮后2000转离心5min,弃去上清液,每管再加200μl洗涤液,剧烈振荡,使微球沉淀物悬浮后,用流式细胞仪检测, CBA FCAP Array Software 软件获取数据并分析。

    1.6统计学处理

    统计处理在SPSS13.0软件系统下完成,Treg、IL-10、IL-6水平不符合正态分布,统计方法使用秩和检验,数据均采用均数±标准差(X±S)表示;相关分析使用Spearman相关分析。

    2结果

    2.1活动期、静止期LN患者与正常组外周血Treg水平的比较

    活动期LN患者Treg水平与静止期LN患者比较有显著性差异(P<0.05),活动期LN患者Treg水平与正常组比较有显著性差异(P<0.01)。静止期LN患者Treg水平与正常组比较明显降低(P<0.05)。活动期LN患者IL-10、IL-6水平与静止期比有显著性差异(P<0.01)。(详见表1)

    表1 正常组与LN活动期组、静止期组Treg、IL-10、IL-6的水平变化的比较(X±S)

    注:1)与静止期组比较P<0.05;2)与静止期组比较P<0.01;3)与正常组比较P<0.01;4)与正常组比较P<0.05。

    2.2活动期、静止期LN患者外周血Treg、IL-10、IL-6、SLEDAI等的相互关系

    LN患者Treg水平与IL-10、IL-6、SLEDAI之间呈负相关(P<0.05),与ds-DNA呈负相关(P<0.01)。LN患者外周血IL-10水平与SLEDAI、ds-DNA、IL-6呈正相关(P<0.01)。IL-6与ds-DNA无相关性。(详见表2)。

    表2 LN患者SLEDAI 、IL-10、IL-6、Treg水平相关性

    注:1) P<0.01;2)P<0.05。

    3 讨论

    根据Treg的来源不同可将其分为天然调节性T细胞(nTreg)和获得性调节性T细胞(iTreg) [3]。天然Treg在外周CD4+细胞中约占5%~10% ......

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