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编号:12093724
低强度脉冲超声刺激对人类牙周膜细胞BMP-2表达效应的研究(2)
http://www.100md.com 2011年5月1日 杨尊 任蕾西 宋锦璘 周洁 李发琪 赵纯亮 王智彪
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    参见附件(2632KB,4页)。

     1材料和方法

    1.1 主要材料与设备:改良型α-MEM培养基(美国Hyclone公司);胎牛血清(美国Hyclone公司);BMP-2引物(大连TaKaRa公司合成); RNAiso Plus裂解液(大连TaKaRa公司);SYBR Premix Ex Taq TMⅡ(大连TaKaRa公司);dNTP Mixture(大连TaKaRa公司);Random Primer 6mer(大连TaKaRa公司);Ribonuclease Inhibitor(大连TaKaRa公司);M-MLV Reverse Transcriptase(美国Promega公司); DEPC(美国Bio Basic Inc公司);六通道LIPUS换能器由重庆医科大学超声医学工程中心提供;荧光定量PCR仪Rotor-Gene 6000实时定量核酸扩增系统(澳大利亚Corbett Life Science公司)。

    1.2 h-PDLCs体外培养:人类牙周膜标本来自重庆医科大学附属口腔医院颌面外科门诊,在征得患者及家长同意下收集12~20岁健康青少年因正畸需要拔除的双尖牙。无菌条件下,用含双抗(青霉素、链霉素)浓度为100单位/ml的PBS液反复冲洗洗牙齿去污和灭菌,直至牙齿和冲洗过的PBS液不再有血污。此时将洗净的牙齿移人另一无菌培养皿中,滴加少许含20%胎牛血清的DMEM培养液,保持根面湿润。用无菌刀片反复纵横切割根中l/3的牙周膜组织,仔细进行刮除,使组织块小于1mm×1mm×1mm。将刮下的组织碎屑用含双抗的PBS液漂洗2次,吸除多余水分。用无菌口腔探针小心将组织块以均匀间距接种于六孔板底壁上,滴加少量含20%胎牛血清α-MEM培养基,置CO2培养箱(5% CO2、95%空气、l00%湿度,37℃恒温)孵育,隔夜后再加将培养基补至约1.5ml。待原代细胞长满单层后进行传代, 0.125%胰蛋白酶进行消化,约3~5min后细胞间隙增大,胞体回缩变圆。此时加入含10%胎牛血清的α-MEM终止消化,轻轻拍打瓶壁使细胞从瓶壁上脱落下来,并用吸管吹打均匀形成细胞悬液,转移细胞悬液入离心管,1 000rpm×5min离心后弃去上清液,加入适量培养基充分吹打,按1:2比例传代接种于细胞培养瓶中。

    1.3 LIPUS处理及RNA提取:取第4代H-PDLCs接种于六孔细胞培养板,对应六通道LIPUS发射仪,采用通过超声耦合剂作为媒介的辐照方式。设定LIPUS参数频率:1.0~1.5 MHz;脉冲重复频率:1.0kHz;脉冲占空比:1:5;幅宽:200μs;输出强度90mW/cm2;辐照时间:20min/天。连续处理1周,分别于处理第1、3、5、7天后提取细胞RNA。

    使用RNAiso裂解液提取总RNA。弃去细胞培养基,用PBS漂洗2遍。每孔中加入1ml的RNAiso裂解液,轻轻摇晃使其与细胞其充分接触,然后静置5min。移液枪充分吹打使细胞脱落,转移至1.5mlEP管中。向裂解液中加入200μl氯仿,盖紧EP管盖,用力震荡,使溶液充分乳化,静置5min。12 000g,4℃离心15min。此时液体分为三层,无色透明上清层为RNA,白色中间层为蛋白质,粉红下层色为无机层。小心吸取上清层,移至新的1.5mlEP管中。(注意勿吸出白色中间层)向上清中加入等体积的异丙醇,上下颠倒EP管充分混匀,静置10min。12 000g,4℃离心10min。弃上清,管底见少量白色沉淀物质,即为RNA。无水乙醇和DEPC水现配成75%的乙醇1 000μl,洗涤RNA沉淀。12 000g, 4℃离心5min。小心弃去乙醇,保留沉淀,在空气中气干3~5min。加入DEPC水溶解RNA。

    1.4 实时定量PCR检测:取2μg总RNA,加入0.5μg引物6聚体,加DEPC水补足体积15μl。混匀后上RT-PCR仪进行逆转录,设置程序为70℃,5min。第一步完成后取出EP管立即冰浴,稍离心。加入试剂M-MLV 5×buffer 5μl,dNTP 2.5μl,M-MLV RT 1μl,Ribonuclease Inhibitor0.625μl,DEPC水补足至总体积25μl。程序设置为37℃,60min→4℃延伸。

    c-DNA制备完成后,进行实时定量PCR检测。加入反应体系SYBR Premix Ex TaqTMⅡ12.5μl,cDNA1.0μl,上游引物0.5μl,下游引物0.5μl,ddH2O 10.5μl。程序设定:95℃预变性30s;95℃,10s;退火温度54℃,30s;72℃,30s; 45个循环。PCR引物合成序列见表1。实时定量PCR扩增曲线见图1,实时定量PCR溶解曲线见图2。

    1.5 统计分析:采用SPSS 13.0统计软件对△Ct值组间差别比较进行方差分析。采用2^(-△△CT)法对BMP-2扩增结果ct值进行相对定量分析。

    2结果

    2.1 LIPUS处理对H-PDLCs内BMP-2基因表达的影响:实时定量PCR结果显示,LIPUS处理后H-PDLCs第1天、3天、5天、7天BMP-2表达均有不同程度增高。以同期培养的未受LIPUS处理的H-PDLCs为对照,其中处理第1天,△Ct值处理前后组间无差异(P>0.05);处理第3天BMP-2表达增加6.07倍,△Ct值处理前后组间差别具有统计学差异(P<0.05);处理第5天BMP-2表达增加2.3倍,△Ct组处理前后间差别具有统计学差异(P<0.05);处理第7天,△Ct值处理前后组间无差异(P>0.05)。

    2.2 人类牙周膜细胞受LIPUS刺激后BMP-2基因表达的时间变化趋势:LIPUS对H-PDLCs处理后的第1天BMP-2增加不明显,处理后第3天,BMP-2表达明显升高,相对空白组增加6.07倍,而后开始下降,在处理后第5天BMP-2相对表达下降至2.30倍,在第7天回到初始水平。BMP-2表达水平见图3。

    3讨论

    LIPUS指强度在100 mW/cm2 以下的脉冲式超声波,在两个脉冲之间有较长的间歇时间,相对产热较弱,不具侵入性[4]。以往大量研究证实LIPUS可有效促进新鲜骨折愈合、治疗骨不连等[9-10] ......

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