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编号:12667368
原代大鼠胰岛的分离纯化及功能鉴定(1)
http://www.100md.com 2014年3月1日 中西医结合心脑血管病杂志 2014年第3期
     摘要:目的探讨成年大鼠胰岛分离、纯化的方法,为成人胰岛的分离纯化奠定基础。方法通过用胶原酶P消化胰腺及利用Histopaque 1077分离液离心分离纯化雄性SD大鼠胰岛,用双硫棕(DTZ)染色,吖啶橙碘化丙啶(AO/PI)染色和胰岛素分泌实验来鉴定胰岛的纯度、活性和功能;利用激光共聚焦技术检测胰岛细胞中钙离子浓度。结果分离获得的胰岛可被DTZ和AO/PI分别染成猩红色和绿色;体外刺激胰岛素分泌实验,2.8 mM、8.3 mM、16.7mM葡萄糖情况下胰岛素分泌量分别是:(11.7 ± 1.4)uIU/mL、(38.2 ± 8.7)uIU/mL、(86.3 ± 5.1)uIU/mL;在2.8 mM葡萄糖基础上,8.3 mM葡萄糖明显增加胰岛细胞中钙离子浓度,16.7 mM葡萄糖在8.3 mM葡萄糖基础上又进一步升高钙离子浓度。结论采用胶原酶P消化法及Histopaque 1077分离液离心分得的胰岛纯度高,活性、功能良好,随着葡萄糖浓度的增加,胰岛细胞中钙离子浓度明显增加。

    关键词:胰岛;分离;钙离子;原代大鼠
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    中图分类号:R329.2R256.2文献标识码:Adoi:10.3969/j.issn.16721349.2014.03.051文章编号:16721349(2014)03034502

    老年人是糖尿病高发人群,在全部心脑血管病死亡的病例中,除直接与糖尿病有关外,其余13%的病例与高血糖有关,高血压合并糖尿病成为脑卒中死亡的重要原因[1]。近年来有关糖尿病治疗研究引起了人们的关注,其中有很多胰岛移植的研究。随着分子生物学技术的发展,虽然各个方面取得了很大进步,但其移植效果并不理想,在人体的胰岛移植中,活性能保持一年以上不超过40%[2]。其主要原因是胰岛分离纯化后活性不高,移植后的排斥反应以及免疫抑制剂对大鼠胰岛的毒性作用[3]。因此获得足量、活性良好的胰岛非常重要。本实验采用胶原酶P消化胰腺及Histopaque 1077分离液直接离心分得大鼠胰岛,并对其活性及功能进行评价。

    1材料与方法
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    1.1动物雄性SD大鼠,体重250 g~300 g,由山西医科大学实验动物中心提供。

    1.2试剂胶原酶P购自瑞士罗氏公司;双硫棕(DTZ)、HEPES、葡萄糖、多聚赖氨酸(分子量15~30万)购自美国Sigma公司;1640培养基、胎牛血清购自美国Hyclone公司;DispaseⅡ购自美国Amresco公司;青链霉素(双抗)购自北京索莱宝公司;AOPI购自南京建成生物科技有限公司;大鼠胰岛素放射免疫试剂盒购自北京北方生物技术研究所。

    1.3主要仪器超净工作台(北京世安科技林净化技术有限公司);CO2细胞培养箱(北京博奥恒信生物科技有限公司);台式冷冻离心机(长沙湘仪离心机仪器有限公司);奥林巴斯激光共聚焦显微镜IX81(日本奥林巴斯IX51)。

    1.4方法

    1.4.1原代大鼠胰岛及胰岛细胞分离培养无菌条件下,大鼠断头处死,迅速打开胸腹,在胆总管汇入十二指肠的入口处用止血钳夹住,经胆总管缓慢注入13 mL 4 ℃的1 mg/mL胶原酶P溶液,38 ℃水浴消化11 min,取出立即加入20 mL 4℃培养液(含10%胎牛血清)终止消化,剧烈振摇胰腺至细沙状,用孔径350 μm的滤网过滤,1 200 r/min,离心2 min,去上清,加入10 mL分离液Histopaque 1077至管中重悬组织,将10 mL 1640培养基慢慢顺管壁注入管中,3 200 r/min,离心23 min。收集界面间的悬浮胰岛,在含10%胎牛血清,100 U/mL青霉素,100 μg/mL链霉素的1 640培养基中培养,并置于37℃,5% CO2,100%湿度的孵箱中培养[4]。将胰岛用含3 mmol/L EDTA的无钙镁PBS溶液脱钙后,加入DispaseⅡ(5 mg/mL)酶液,培养箱孵育6 min,用4℃培养液终止消化,吹打使胰岛分散,1 000 r/min,离心2 min,将胰岛细胞接种在培养皿中,按胰岛培养条件培养[4]。
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    1.4.2大鼠胰岛的DTZ纯度鉴定DTZ 10 mg溶于10 mL DMSO,用Hanks液(pH7.8) 1∶1 000稀释,0.22 μm孔径滤膜过滤,与胰岛制备物混合,室温10 min后镜检[5];大鼠胰岛的AO/PI活性鉴定:用Hanks液配制储存液,AO:670 μmol/L,PI:750 μmol/L,4 ℃避光保存,使用前取0.01 mL AO与1 mL PI 混合,用Hanks液10倍稀释,0.22 μm孔径滤膜过滤,与胰岛混合10 min,在荧光显微镜下采用490 nm激发光,510 nm发射光镜检[6]。

    1.4.3胰岛素分泌实验配置葡萄糖浓度分别是2.8 mM,8.3 mM,16.7 mM的KRBH孵育液。方法:①取6个Eppendorf管标号,各加1 mL 2.8 mM葡萄糖的KRBH液,每管挑入5个胰岛,37℃孵育30 min后,弃上清。②每管再加入1 mL 2.8 mM葡萄糖的KRBH液孵育,37℃孵育30 min,收集上清,标号,-20℃保存待测。③依次给予8.3 mM葡萄糖、16.7mM葡萄糖孵育,方法同上,收集上清,-20℃保存待测。用放射免疫法检测上述待测样品。

    1.4.4激光共聚焦检测细胞内部钙离子浓度胰岛用Fluo 4AM(4 μM)染料在37℃的条件下孵育半小时,孵育完用含2.8 mM糖的Hanks液轻轻冲洗两遍,防止染液残留影响之后的细胞内钙离子浓度的测定,再加入2 mL 含2.8 mM糖Hanks液。使用奥林巴斯激光共聚焦显微镜IX81观察,设置激光波长494 nm,发射波长516 nm。所得到的比值F/F0(细胞荧光减去背景荧光和自身荧光)反应细胞内钙离子浓度的变化[4]。, http://www.100md.com
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    李小东 郭庆 高璟英 张婉 武冬梅 刘云峰 章毅 山西医科大学;山西医科大学基础医学院药理教研室;山西医科大学第一医院;

    【摘要】目的探讨成年大鼠胰岛分离、纯化的方法,为成人胰岛的分离纯化奠定基础。方法通过用胶原酶P消化胰腺及利用Histopaque 1077分离液离心分离纯化雄性SD大鼠胰岛,用双硫棕(DTZ)染色,吖啶橙-碘化丙啶(AO/PI)染色和胰岛素分泌实验来鉴定胰岛的纯度、活性和功能;利用激光共聚焦技术检测胰岛细胞中钙离子浓度。结果分离获得的胰岛可被DTZ和AO/PI分别染成猩红色和绿色;体外刺激胰岛素分泌实验,2.8mM、8.3mM、16.7mM葡萄糖情况下胰岛素分泌量分别是:(11.7±1.4)uIU/mL、(38.2±8.7)uIU/mL、(86.3±5.1)uIU/mL;在2.8mM葡萄糖基础上,8.3mM葡萄糖明显增加胰岛细胞中钙离子浓度,16.7mM葡萄糖在8.3mM葡萄糖基础上又进一步升高钙离子浓度。结论采用胶原酶P消化法及Histopaque 1077分离液离心分得的胰岛纯度高,活性、功能良好,随着葡萄糖浓度的增加,胰岛细胞中钙离子浓度明显增加。

    【关键词】 胰岛 分离 钙离子 原代大鼠

    【基金】国家自然科学基金(No.NSFC 81070662,81273564) 山西省自然科学基金(No.2012011039-8) 山西省高等学校优秀青年学术带头人支持计划(No.2011-24) 山西省留学人员科技活动项目择优资助(No.2011-762) 山西省回国留学人员科研资助项目(No.2012-046) 山西省卫生厅科研课题(No.201201062)

    【分类号】R587.1

    老年人是糖尿病高发人群,在全部心脑血管病死亡的病例中,除直接与糖尿病有关外,其余13%的病例与高血糖有关,高血压合并糖尿病成为脑卒中死亡的重要原因[1]。近年来有关糖尿病治疗研究引起了人们的关注,其中有很多胰岛移植的研究。随着分子生物学技术的发展,虽然各个方面取得(李小东 郭庆 高璟英 张婉 武冬梅 刘云峰 章毅)
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