兔泪道置管术拔管后的临床及病理变化
泪管,泪囊,管壁,1材料与方法,2方法,3统计学方法,2结果,1临床表现,2病理变化,3两组拔管后不同时间管壁厚度的变化,4两组拔管后不同时间成纤维细胞密度的变化,5两组拔管后不同时间成纤维细胞PCNA阳性率的变化,3讨论
白 蒙 胡文学 付新录 姜 健 莫 莉1.广东省深圳市福田区中医院病理科,广东深圳 518040;2.广东省深圳市龙岗区人民医院眼科,广东深圳 518172;3.中山大学实验动物中心,广东广州 510006
鼻泪管阻塞及泪囊炎多采用手术治疗。泪道置管术操作较简单,面部不留瘢痕,但拔管后存在一定的复发率[1-3]。 拔管后复发的机制,拔管后抗瘢痕治疗的时机和疗程,临床存在争议[1-10]。 本研究拟通过电灼损伤结合缝合法,制造兔鼻泪管阻塞的模型,对兔鼻泪管阻塞模型行泪道置管术2 周,观察拔管后鼻泪管组织的病理变化,探讨拔管后复发的可能机制。
1 材料与方法
1.1 材料
实验仪器、器材准备及试剂:WZC-Ⅲ泪道治疗仪一套,选用1 mm 探针,头部刮出2 mm 无绝缘层区,兔头固定器,实验用手术器械。 普利灵6-0 可吸收性缝线,5-0 丝 线,BD IntimateⅡ22GA1.0 型 静 脉 留 置针,穿刺端剪平备用。 20%乌拉坦溶液[上海恒远生物科技有限公司,申药字(2010)070031582];0.5%丙美卡因滴眼液(进口药品注册证号:H2009008.2)。 光学显微镜 (日本Olympus,BX-51);Motic 数字切片扫描系统;德国Leica-RM 2245 切片机。
实验动物:取无溢泪、无面部异常的2 月龄健康纯种新西兰大白兔25 只(由中山大学动物实验室提供),体重2.0~2.5 kg,雌雄兼用。
1.2 方法
泪道阻塞模型的制作:使用带少许荧光素钠的生理盐水注射液冲洗双眼泪道证实通畅后,新西兰大白兔适应性饲养1 周。 结合兔泪道高频电灼方法[10]对新西兰大白兔用20%乌拉坦溶液,按5 mL/kg 耳缘静脉麻醉,并用0.5%丙美卡因结膜表面麻醉3 次后,眼部消毒,沿裂隙状泪点适当剪开泪囊至可直视鼻泪管泪囊开口,将探针探入1 侧眼鼻泪管泪囊开口处2~3 mm,方向指向同侧上切牙牙冠顶端,20 W 功率通电后适当旋转并摇摆,通电10 s,完成后予6-0 可吸收缝线缝合鼻泪管泪囊开口处1 针, 制作鼻泪管阻塞模型。术后兔饲养1 周左右,出现溢泪及溢脓症状,此时使用不带针头的针管直接对鼻泪管口冲洗,冲洗液带少许荧光素钠,手术侧冲洗不通,对侧眼通畅即考虑鼻泪管阻塞模型建立成功。鼻泪管阻塞模型建立成功后继续观察1 周,准备置管术前每只兔予氯霉素眼药水双眼点眼,4 次/d,共3 d,控制泪囊炎症。
置管及固定方法:同样用乌拉坦全身麻醉及丙美卡因结膜表面麻醉 ......
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