糖耐量异常患者与糖耐量正常人群肠道菌群差异性研究(1)
【摘要】 目的 探讨糖耐量异常(IGT)患者和糖耐量正常人群肠道菌群的差异性。方法 选取20例糖耐量异常患者作为研究组， 另选20例接受健康体检的健康人群作为常规组。收集所有研究对象的新鲜粪便样品， 提取其中的细菌总DNA， 采用细菌通用扩增引物分别进行聚合酶链式反应(PCR)扩增， 对获得的PCR产物展开测序分析， 测序完成后， 使用ABI实时荧光定量PCR仪检验肠道中常见的细菌种类。比较两组肠道菌群种类及数量。结果 通过检测数据发现， 本研究所有样品中共检查出三类细菌， 分别为拟杆菌门、厚壁菌门和变形菌门， 而拟杆菌门细菌是人体肠道中的主要优势细菌。研究组拟杆菌门中普雷沃氏菌属与拟杆菌属细菌种类数量分别为(2.3±1.4)、(5.1±1.5)种低于常规组的(5.5±2.0)、(8.1±2.5)种， 差异有统计学意义(P<0.05)。研究组厚壁菌门中毛螺菌属与乳酸菌属细菌种类数量分别为(2.2±1.3)、(1.3±0.8)种低于常规组的(6.2±2.1)、(7.0±2.8)种， 差异有统计学意义(P<0.05)。研究组变形菌门中大肠埃希菌与志贺菌属细菌种类数量分别为(4.3±1.3)、(4.1±1.2)种， 对照组变形菌门中大肠埃希菌与志贺菌属细菌种类数量分别为(5.1±1.4)、(4.3±1.3)种， 两组比较差异无统计学意义(P>0.05)。结论 糖耐量异常患者肠道菌群中优势菌群的含量明显低于糖耐量正常人群肠道中优势菌群的含量， 需要针对性地展开治疗。
【关键词】 糖耐量异常;肠道菌群;差异性
DOI：10.14163/j.cnki.11-5547/r.2020.07.022
随着科技进步， 人们的生活質量越来越高， 糖耐量异常患者的肠道菌群情况逐渐成为医疗界的重点研究对象[1]。肠道菌群主要包括人体肠道中的小生物群或基因组。大量实验表明， 肠道菌群不仅会影响到人体的整体健康， 还是导致肥胖、糖尿病等慢性疾病的主要危险因素[2]。葡萄糖耐量是指人体对摄入葡萄糖的耐受能力， 糖耐量异常(IGT)的判断标准为人在用餐结束的2 h内， 血糖值大于正常值， 但尚未达到糖尿病的判断标准， 即称作糖耐量异常[3]。本课题重点研究了糖耐量异常患者的肠道菌群特点， 以及和健康人群之间的区别， 现报告如下。
1 资料与方法
1. 1 一般资料 选取2018年3～8月本院内分泌科收治的20例糖耐量异常患者作为研究组， 另选取于本院接受健康体检的20例健康人群作为常规组。研究组中， 男12例， 女8例;年龄31～45岁， 平均年龄(38.5±4.2)岁。
常规组中， 男9例， 女11例;年龄34～43岁， 平均年龄(38.2±4.1)岁。两组患者一般资料比较， 差异无统计学意义(P>0.05)， 具有可比性。本次研究已经大连大学附属新华医院伦理委员会认证， 并且所有研究对象均详细了解整体过程， 同意进行研究并签订知情同意书。
1. 1. 1 纳入标准 ①与世界卫生组织(WHO)和国际糖尿病联盟(IDF)糖尿病专家委员会(1999年)指出的糖耐量异常判断标准完全吻合。②空腹时血糖值<7.0 mmol/L。③接受葡萄糖耐量实验2 h后， 血糖值<11.1 mmol/L[4]。
1. 1. 2 排除标准 ①患者年龄>25岁且<75岁。②处
于妊娠或者哺乳期的女性。③6个月前伴有严重高血压、心肌梗死或者脑血管意外病史的患者。④患者在研究前3个月内未服用过抗生素， 且在半个月内未服用益生元或益生菌等药物。⑤研究前3个月内未出现腹泻、便秘、痢疾等疾病[5]。
1. 2 方法
1. 2. 1 样本收集 在无菌环境下， 分别收集两组研究对象的新鲜粪便， 在粪便中心位置收集10～15 g， 置入无菌冷存管后冷藏， 样品收集的整体过程均和医院的伦理要求符合[4]。
1. 2. 2 DNA采集 实验样品中微生物总DNA的提取工作， 使用购自德国的QIAamp DNA Stool Mini Kit仪器进行， 样品量为100 mg， 详细的操作方法参考说明书进行。将收集的DNA使用购自美国的NanoDrop ND-1000分光光度计进行测定， 然后置于-80℃的环境下冷藏备用[6]。
1. 2. 3 聚合酶链式反应 参考获得的总DNA进行扩增工作和产物测序， 16S rRNA PCR引物的主要构成包括：测序接头引物、Index以及V3区引物。Index是一种主要构成为6bp核苷酸的序列， 主要用途为标记PCR产物的来源。PCR的扩增体系共包括25 μl， 扩增条件为：①在98℃的环境下预变性30 s;②在98℃环境下变性10 s， 在50℃的环境下退火30 s， 在72℃的环境下延伸30s， 持续循环20次;③在72℃的环境下延伸7 min， 并于4℃的环境下储存。反应完成后， 使用浓度为1.5%的琼脂糖凝胶电泳检验扩增片段的大小， 使用QIAquick Gel Extraction Kit仪器处理目的条带胶。使用美国的Illumina Miseq高通量测序平台对获得16S rRNA-V3区的PCR产物展开测序[7]。
1. 2. 4 生物信息学分析和荧光定量PCR 测序完成后， 对PCR产物的高质量序列展开提取， 然后使用ABI实时荧光定量PCR仪检验肠道中常见的细菌种类[8]。
1. 3 统计学方法 采用SPSS23.0统计学软件对数据进行处理。计量资料以均数±标准差( x-±s)表示， 采用t检验;计数资料以率(%)表示， 采用χ2检验。P<0.05表示差异有统计学意义。, 百拇医药(王智峰 徐心悦 姜玫)
【关键词】 糖耐量异常;肠道菌群;差异性
DOI：10.14163/j.cnki.11-5547/r.2020.07.022
随着科技进步， 人们的生活質量越来越高， 糖耐量异常患者的肠道菌群情况逐渐成为医疗界的重点研究对象[1]。肠道菌群主要包括人体肠道中的小生物群或基因组。大量实验表明， 肠道菌群不仅会影响到人体的整体健康， 还是导致肥胖、糖尿病等慢性疾病的主要危险因素[2]。葡萄糖耐量是指人体对摄入葡萄糖的耐受能力， 糖耐量异常(IGT)的判断标准为人在用餐结束的2 h内， 血糖值大于正常值， 但尚未达到糖尿病的判断标准， 即称作糖耐量异常[3]。本课题重点研究了糖耐量异常患者的肠道菌群特点， 以及和健康人群之间的区别， 现报告如下。
1 资料与方法
1. 1 一般资料 选取2018年3～8月本院内分泌科收治的20例糖耐量异常患者作为研究组， 另选取于本院接受健康体检的20例健康人群作为常规组。研究组中， 男12例， 女8例;年龄31～45岁， 平均年龄(38.5±4.2)岁。
常规组中， 男9例， 女11例;年龄34～43岁， 平均年龄(38.2±4.1)岁。两组患者一般资料比较， 差异无统计学意义(P>0.05)， 具有可比性。本次研究已经大连大学附属新华医院伦理委员会认证， 并且所有研究对象均详细了解整体过程， 同意进行研究并签订知情同意书。
1. 1. 1 纳入标准 ①与世界卫生组织(WHO)和国际糖尿病联盟(IDF)糖尿病专家委员会(1999年)指出的糖耐量异常判断标准完全吻合。②空腹时血糖值<7.0 mmol/L。③接受葡萄糖耐量实验2 h后， 血糖值<11.1 mmol/L[4]。
1. 1. 2 排除标准 ①患者年龄>25岁且<75岁。②处
于妊娠或者哺乳期的女性。③6个月前伴有严重高血压、心肌梗死或者脑血管意外病史的患者。④患者在研究前3个月内未服用过抗生素， 且在半个月内未服用益生元或益生菌等药物。⑤研究前3个月内未出现腹泻、便秘、痢疾等疾病[5]。
1. 2 方法
1. 2. 1 样本收集 在无菌环境下， 分别收集两组研究对象的新鲜粪便， 在粪便中心位置收集10～15 g， 置入无菌冷存管后冷藏， 样品收集的整体过程均和医院的伦理要求符合[4]。
1. 2. 2 DNA采集 实验样品中微生物总DNA的提取工作， 使用购自德国的QIAamp DNA Stool Mini Kit仪器进行， 样品量为100 mg， 详细的操作方法参考说明书进行。将收集的DNA使用购自美国的NanoDrop ND-1000分光光度计进行测定， 然后置于-80℃的环境下冷藏备用[6]。
1. 2. 3 聚合酶链式反应 参考获得的总DNA进行扩增工作和产物测序， 16S rRNA PCR引物的主要构成包括：测序接头引物、Index以及V3区引物。Index是一种主要构成为6bp核苷酸的序列， 主要用途为标记PCR产物的来源。PCR的扩增体系共包括25 μl， 扩增条件为：①在98℃的环境下预变性30 s;②在98℃环境下变性10 s， 在50℃的环境下退火30 s， 在72℃的环境下延伸30s， 持续循环20次;③在72℃的环境下延伸7 min， 并于4℃的环境下储存。反应完成后， 使用浓度为1.5%的琼脂糖凝胶电泳检验扩增片段的大小， 使用QIAquick Gel Extraction Kit仪器处理目的条带胶。使用美国的Illumina Miseq高通量测序平台对获得16S rRNA-V3区的PCR产物展开测序[7]。
1. 2. 4 生物信息学分析和荧光定量PCR 测序完成后， 对PCR产物的高质量序列展开提取， 然后使用ABI实时荧光定量PCR仪检验肠道中常见的细菌种类[8]。
1. 3 统计学方法 采用SPSS23.0统计学软件对数据进行处理。计量资料以均数±标准差( x-±s)表示， 采用t检验;计数资料以率(%)表示， 采用χ2检验。P<0.05表示差异有统计学意义。, 百拇医药(王智峰 徐心悦 姜玫)