Microrna-34a靶向Sirt1调控IL-1β诱导的软骨细胞凋亡研究*
共转染,报告基因,荧光素酶,1材料与方法,1实验材料,2实验方法,3统计学方法,2结果,1DAPI染色及流式细胞术检测细胞凋亡结果,2观察miR-34a对野生型以及突变型质粒共转染时
陈蓟 刘弼 熊怡胜 黄雪晴(暨南大学第二临床医学院深圳市人民医院骨科,广东 深圳 518020)
在骨关节炎(osteoarthritis,OA)研究中,已有越来越多的miRNA被发现与关节炎的发生有千丝万缕的联系,Microrna-34a(miR-34a)是其中之一[1]。已有研究[2]表明,miR-34a通过调节细胞周期从G1期过渡到S期,有抗增殖作用,miR-34a同样能由p53诱导,从而促进细胞凋亡和细胞周期阻滞。Sirt1基因亦是已被证实在OA发生发展过程中起重要作用[3];然而miR-34a调控Sirt1在骨关节炎、软骨细胞中的研究报道较少见。本实验研究在IL-1β诱导的软骨细胞模型中,miR-34a对Sirt1的作用及其对Bcl-2的表达影响。
1 材料与方法
1.1 实验材料
DMEM高糖培养基、胎牛血清(Hyclone);DAPI染色试剂盒(Sigma);Lipofectamine 2000、RT-PCR试剂盒(Invitrogen);miR-34a mimic(RiboBio);Sirt1抗体、GAPDH抗体(Santa Cruz);Bcl-2抗体(Bioss);低温高速离心机(Eppendorf);DNA扩增仪(Biometra)。
1.2 实验方法
1.2.1 C57BL/6J小鼠膝关节软骨细胞的分离、纯化、培养和刺激处理:无菌操作下取小鼠双膝关节,磷酸缓冲盐溶液(phosphate buffer saline,PBS)冲洗,剪取全部膝关节软骨。在显微镜下去除关节囊周围组织,并将软骨组织与深层组织仔细分离。剪碎软骨组织后用0.2%II型胶原酶消化4~6 h,离心去上清,培养基洗涤后再用含15%胎牛血清培养液分散培养。随机分为两组,正常对照组与IL-1β组,IL-1β终浓度为100 ng/ml,继续培养,在加入IL-1β后24 h进行观察和检测。
1.2.2 DAPI染色与流式细胞术观察软骨细胞凋亡:取第2代软骨细胞,调整密度为2×105/ml,接种于6孔板进行爬片。IL-1β组和对照组分别干预,24 h后按照DAPI染色试剂盒及AnnexinV-FITC/PI凋亡试剂盒说明书操作,观察细胞凋亡情况。
1.2.3 荧光素酶报告基因实验验证:分别构建包含miR-34a种子序列结合位点野生型质粒、包含种子序列突变位点的突变型质粒(pmir-Glo-SIRT1-3’UTR WT和Mut) ......
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